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我的操作步骤:
' D! Q7 o2 G! j. ^. z' P# g1.手术室无菌剪取的脐带保存在【4℃含200u/ml青霉素,200ug/ml链霉素的DMEM/F12】中,12h之内带回实验室处理;【以下操作均在冰盒上进行:】
9 Y/ ~5 v+ x: _3 f; a# X4 `* D2.超净台内,选取血管内无明显瘀血的脐带小段约2CM长度,剪取后放入【含双抗的PBS溶液中】冲洗4次,将血管内残留血液洗净,直至PBS无明显颜色变化为止;
9 z& q. c z* X5 {3.小皿内、在DMEM/F12浸泡下对脐带进行分离,待2根动脉分离完毕后,用持针器撕取位于脐带羊膜和静脉之间的胶状组织;& M# |! n6 @3 E* {" _' a% C
4.用解剖剪将撕取的条索状组织剪碎,呈小颗粒状,大小约1-2立方毫米;
% X4 f( K% L- B3 Z5.“NEST” T25培养瓶用FBS润湿瓶底以后,将小组织块接种到瓶底,约20-25块/瓶;" n9 F C ^0 f/ E' L5 P
6.将接种后培养瓶倒置,放到37℃、5% CO2的培养箱中孵育;
5 l6 V: z w8 |6 D7.将倒置的培养瓶分为3批,分别在倒置后18h、20h、22h将瓶子进行翻转(此时组织块周围形成一层膜状液体,有轻微流动性),滴加2.5ml培养液【10% FBS、2mM谷氨酰胺、100u/ml青霉素,100ug/ml链霉素、89% DMEM/F12】,正置、培养箱内继续孵育;; e' @. ]! O, v4 p0 j) L h
8.培养瓶翻转后第6天,培养液呈淡黄色,予以半量换液,添加3ml培养液;
0 q' i* K5 R8 N! A9.今天是换液后第4天,(培养后第10天)培养液颜色变化不太明显,呈淡红色,镜下观察无细胞游出,未予换液,打算3天后再行观察换液。
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***另外,我的FBS--- Giboco;DMEM/F12---HyClone;双抗---Sigma; 谷氨酰胺---Amresco; PBS---Solarbio粉末自己配的。" @" C ~3 F) n; [' P
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我的问题:这次培养的组织块,贴壁很牢,第一次换液几乎没有组织块脱落,由于组织块较小,几乎呈单细胞层进行贴壁,镜下观察细胞间融合也还好,,但是感觉细胞代谢很慢,培养液颜色变化很少,还是淡红色,第10天还是没有细胞游出来。感觉好迷茫......是我的培养方法有问题吗?我养这个细胞已经3个多月了,一直没有成功,真的要哭死了,恳请各位老师指导!!谢谢了!!" M" V7 O* I ]$ h1 X. F
附图:今天拍的组织块,第一张10倍,第2张15倍5 a2 f8 a. ?3 p/ U) @0 G
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