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小鼠胚胎干细胞培养几天后贴壁不牢换液容易飘走怎么办?   [复制链接]

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楼主
发表于 2016-3-8 09:57 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
我在明胶包被过的6孔板培养B6小鼠胚胎干细胞系,明胶包被2h,弃明胶后复苏小鼠mES培养,每天换液。换液前培养基平衡至室温。传代后细胞大量漂浮,类似EB球。没扔,观察了几天,没漂浮的零星几个克隆仍然在长,大部分漂浮的不再贴壁,像EB球一样。这个问题怎么解决啊?6 k4 x" ~/ D* |2 H! \' t
我想到的是换液前培养基平衡至37℃,和细胞温度相同,而不是平衡至室温。希望各位能谈谈自己的看法,谢谢!
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沙发
发表于 2016-3-11 09:44 |只看该作者
你上网查一下小鼠的胚胎干细胞有没有悬浮的,我们实验室养的大鼠的ips大部分都是漂浮的,只有少部分是贴壁的,这些都是属于正常现象,换液的时候就把上清液离心,然后用新的培养基重悬加入皿内即可
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藤椅
发表于 2016-3-14 11:44 |只看该作者
回复 康小纬 的帖子
4 F9 o; P5 D( [  g9 d
. g) P/ c; R" S" I谢谢!我再查查文献。不过目前看到的文献里没有用悬浮培养法维持小鼠mES生长的。只有培养EB球时用悬浮培养。
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板凳
发表于 2016-3-14 17:05 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
回复 天龙八部 的帖子
- N0 M) W  e1 P5 k. \/ M; w/ A: H8 Q' V& I' b7 R
你用的什么培养液?含血清培养液,小鼠ES细胞是贴壁很好的。无血清培养条件下贴壁不好。
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报纸
发表于 2016-3-21 14:25 |只看该作者
回复 abcstem 的帖子8 r! u& B" D$ T2 w6 s2 z
, b, A2 P3 f# j( n* Q; r1 G0 R
在MEF上养的细胞用的含有15% FBS的培养基;明胶上养的细胞不含血清。
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地板
发表于 2016-3-29 13:47 |只看该作者
回复 天龙八部 的帖子
- z9 G& y# U1 W' k- H. t+ R/ }: |. h+ f: H4 W
无血清条件下小鼠ES细胞在明胶上培养时是贴壁很差的。
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发表于 2016-4-18 16:13 |只看该作者
为什么要在明胶上做ES的无血清培养?好歹也要换个细胞基质比如matrigel啥的吧,明胶太基础了。
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发表于 2016-7-26 10:52 |只看该作者
回复 天龙八部 的帖子
! ]+ Q* l3 `* C- B. V  k, v% X' F3 Q6 |7 X6 y* p( T9 M1 y
小鼠胚胎干细胞的确没有用悬浮方式培养的。7 P. W- D9 Q! D& }) v, c9 w# `
无血清情况下贴壁确实很差。% w0 b0 J2 h  i8 e6 ~% r; \5 L, l
你是用的无血清培养基?是Austin Smith实验室的2i+LIF的培养基吗?
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发表于 2016-8-3 08:56 |只看该作者
大小鼠的IPS都可以加点FBS让他贴,还可以加ROCK 抑制剂也行,如果要进行无血清培养的话,可加入KOSR,这个能让IPS、ES贴的
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发表于 2016-8-5 16:05 |只看该作者
你可能用的培养基不对,你可能用的是DKO+2i,就是20%KOSR+2i,试试别的培养基。% N# S- N% s. `' h* V
' X# }& Q, H$ s( a- n0 v
1,用冰冷的0.2%gelatin5ml 铺在10cmdish,37度5分钟,这是采用热胀冷缩的原理将胶原固定在dish上7 Z  A, H% d% |& Y5 e. N& D
2,用BESM20%FBS+DMEM或者10%FBS+N2B27+2i贴壁过夜,
: B6 g3 f% w# e4 E# t! K3,第二天换上N2B27+2i 培养基$ H% J: O7 t  O% a
3 G# `$ B, o6 ~) \) K( f# m
保证细胞长得好
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