关于某生物论坛一篇关于除去成纤维细胞培养基的讨论

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奉上原文：' o+ e4 y. s& H0 A0 c
取新生1-3天SD大鼠10-15只，无菌条件下剖腹取出胰腺置入无菌培养皿中，用眼科剪去除非胰腺组织， 4℃ Hanks液清洗三次后，用眼科剪反复剪切至<0.5mm3组织块，取浓度为1g/L的V型胶原酶溶液5-10ml与之混合,转入三角烧瓶中，于37℃恒温水浴振荡器消化30-40min， 加入两倍体积4℃Hanks液终止消化，用吸管反复吹吸后过80目 筛网，滤液以800rpm低速离心70s去上清液，并用4℃ Hank's液低速离心清洗2次，除去单个腺泡及上皮细胞。加入含2.5mg/L碘乙酸的PRMI1640完全培养基（含10%胎牛血清、10mmol/L HEPES缓冲液、1mmol/L丙酮酸钠、100000u/L青霉素G钾、100mg/L链霉素、71.5umol/L β-巯基乙醇）中制成细胞悬液,接种于75ml玻璃培养瓶中,于37℃,5%CO2,95%空气条件下培养5h后，用无血清培养基低速离心清洗3次,以除去成纤维细胞。然后用正常完全培养基培养24h，转瓶弃去贴壁细胞，用无血清培养液低速离心洗涤两次，沉淀物即为纯化胰岛。再用PRMI1640完全培养基养吧，可长成胰岛单层细胞。
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讨论：（1）碘乙酸在培养基中起什么作用？5 X! {" A9 R5 v9 H: s' y/ j- ~6 e( n! P
      （2）是否可以真的去除成纤维细胞？
6 m) x! x( h2 W6 I0 i$ y  ~      （3）有谁用过这种方法，可以获得胰岛细胞吗？