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作者：胡晓霞，朱筑霞， 陈刚，谭新杰作者单位：1．贵阳医学院 生理学教研室， 贵州 贵阳 550004；2.贵州省人民医院 干医科， 贵州 贵阳 550002
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2 N. |' W' Q- I& E& w( U: T 【摘要】 目的： 建立胎鼠大脑皮层神经干细胞体外分离、培养、分化及鉴定的方法，探讨神经干细胞的基本生物学特性。方法： 取孕14 d胎鼠大脑皮层，吸管吹打机械分离制成单细胞悬液，采用无血清培养和胎牛血清诱导分化， 应用免疫荧光技术鉴定神经干细胞及其分化的子代细胞。结果： 从胎鼠大脑皮层分离的细胞呈神经巢蛋白（Nestin）免疫阳性并能在体外传代培养，血清诱导分化后的细胞可表达神经元、星形胶质细胞的特异性抗原微管相关蛋白2和胶质纤维酸性蛋白，诱导分化成的神经元能表达突触的特异性标志Synatophymin。结论： 分离和培养的细胞能表达神经干细胞的特异性标志物Nestin，并且具有很强的增殖能力和多向分化潜能，属于中枢神经系统的神经干细胞。
- L5 Z. L+ N A* ]) P0 E M 【关键词】干细胞 大脑皮质 细胞培养 细胞分化 胚胎 大鼠 Sprague Dawley' |! q, d/ b% L! Z
Isolation, Cultivation, Differentiation Induction and Identification of Neural Stem Cells from Embryonic Rat( J [4 m% q3 L( A- t) n
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) i7 U3 a5 [9 g v$ M4 M* M7 `6 Q HU Xiaoxia, ZHU Zhuxia，CHEN Gang，TAN Xinjie/ T* R' t( w# _% w: q
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1.Department of Physiology, Guiyang Medical College, Guiyang 550004, Guizhou, China：
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7 L( W% o' W! e4 m3 W9 u 2. Department of Carders' Wards , Guizhou Provincial People's Hospital, Guiyang 550002,Guizhou China9 `0 ]& K, N3 a2 n! s
. O3 v* q' B, e0 l! i: z; h" ^5 E3 [ ［Abstract］ Objective: To establish a method for isolation, cultivation, differentiation induction, and identification of neural stem cells (NSCs) from embryonic rat in vitro, and explore the basic biological features of these cells. Methods： The mesencephalon of rat with conceptus age of 13 days was taken out and dissociated into single cell suspension mechanically, and then cultured in serumfree medium. Fetal bovine serum was used to induce cell differentiation. The isolated cells and their progeny were observed by using immunofluorescence technique. Result： The isolated cells showed nestin positive reaction and could be cultured in vitro in series. After being induced by fetal bovine serum, microtubuleassociated protein 2 (MAP2) and glial fibrillary acidic protein (GFAP) which are specific antigens in neuron and astrocyte expressed in these cells, and synatophymin, a specific signal of synapse, was also expressed in the differentiated neurons. Conclusion： The isolated and cultured cells are NSCs of central nervous system, and possess strong capability of proliferation and potency of multidirectional differentiation.
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8 R9 |3 m" ?) y/ [* d' ]7 M ［Key words］ stem cells; cerebral cortex; cell culture; cell differentiation; embryo; rats, spraguedawley+ v8 M a0 A8 ]4 j# F4 @* m% K: N
4 f$ N: X8 m* Z7 j" n6 \; F 传统观念认为，哺乳动物的神经组织只有死亡，没有再生能力。自从上世纪90年代初科学家们分离、培养出神经干细胞(Neural stem cells,NSCs）以来,人们相继从各种动物及人的中枢神经系统分离、培养了NSCs[1,2] 。NSCs的发现不仅打破了神经元不会再生的传统观念，而且为许多以往难以治疗的神经系统疾病提供了新的治疗思路和途径。2007年6月利用细胞分离、无血清培养、血清诱导分化及免疫荧光等技术，证明了本实验所分离的细胞群为NSCs，以期为进一步使用和研究NSCs奠定理论及实验基础。
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) E0 L6 D4 Y2 M/ O( V, k+ k 1材料与方法
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1.1材料
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+ v4 n' Y: D ~) F, K$ c DMEM/F12、B27、胎牛血清购自GIBCO公司，bFGF、Nestin抗体、突触素抗体Snaptophysin购自SIGMA公司，MAP2抗体、GFAP抗体购自Santa Cruz Biotechnology公司，倒置相差显微镜及荧光显微镜为NIKON公司产品。
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/ A+ m- s( d% \% O4 ^ 1.2NSCs的分离培养[3～5]4 F- a5 W! _7 W9 X' \
: O0 H/ \/ S+ `( n' c 成年雌性和雄性SD大鼠各1只,体重220～260 g,雌雄合笼后,检查阴栓,见阴栓计为孕0 d；孕14 d时取胎鼠,在解剖显微镜下仔细分离获得胎鼠大脑皮层,再用DHanks液漂洗,用眼科剪反复切割组织,再用200目细胞筛过滤,收集入离心管中,反复吹打,制成单细胞悬液,经细胞计数后,分装入50 ml培养瓶中,细胞数约为1106/ml。培养条件: DMEM/F12 6 ml B27120 μl bFGF12 μ1,37 ℃, 5%CO2; 每6～7 d传代1次。
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& ^! v& Q5 G+ f( A: y- D8 _ 1.3NSCs的诱导分化( c* l' y' `3 v5 P. F& v+ R
1 E" G7 A, o( }* P/ \ 取第4代传代培养的NSCs,将其吹打成单细胞后，以5104/片细胞密度种于经0.1%多聚赖氨酸处理过的盖玻片上,培养条件为: DMEM/F121.5 ml B2730 μl FBS 150 μl, 37 ℃,5%CO2,培养7 d。$ V4 s( a0 S o' E' Q
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1.4免疫荧光单标法鉴定NSCs及其子代细胞
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1.4.1Nestin免疫反应阳性细胞 9 [+ Q7 u! Q" B( f3 W. M
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将悬浮培养的细胞团用4 %多聚甲醛固定30 min后涂在载玻片上,37 ℃烘干,0.01 mol/L PBS洗5 min3次,加入一抗Nestin（1∶100）后4 ℃过夜，0.01 mol/L PBS洗5 min3次,加入二抗兔抗羊TRITC(1∶100)后37 ℃孵育1 h，0.01 mol/L PBS洗5 min3次，荧光显微镜下观察。- c& X; i1 K/ y
3 N9 N* G& h6 H+ Y' x 1.4.2MAP2 、GFAP、Snaptophymin免疫反应阳性细胞( [) ^2 @) _! |: Z; ?" x
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取诱导分化的NSCs的细胞盖玻片用4%多聚甲醛固定30 min,37 ℃烘干,0.01 mol/L PBS洗5 min3次,分别加入一抗MAP2（1∶100）、GFAP（1∶100）和Snaptophysin（1∶100）后4 ℃过夜，0.01 mol/L PBS洗5 min3次,分别加入二抗羊抗兔FITC(1∶100)和羊抗兔Cy3(1∶100)后37 ℃孵育1 h，0.01 mol/L PBS洗5 min3次，荧光显微镜下观察。
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2结果9 p8 V! m; ^+ Q- S
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2.1NSCs的形态学特征及鉴定
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由孕14 d胎鼠大脑皮层分离培养的原代细胞, 接种后立即在相差显微镜下观察，细胞呈悬浮的圆形状，边界清楚，折光性强，绝大部分单个存在。经6～7 d无血清加bFGF培养后,细胞呈球状集落, 95 %以上的NSCs球呈悬浮生长,细胞增殖旺盛（图1）。原代培养时,培养瓶中可见一些细胞碎片和一些贴壁的杂细胞，但经传代后,这些杂质均减少甚至消失,且生长状态良好。在相差显微镜下，NSCs呈球形或椭圆形，大小不一。经Nestin免疫荧光染色鉴定显示神经干细胞球呈红色荧光（图2）。3 X9 L% B8 L( O. }; C% X& F, }
5 T9 u% G/ A5 V" ^6 n* N 2.2NSCs的诱导分化及其鉴定: s5 P5 R! K! _' G
- w* O" C! {- l2 S: S4 T 胎鼠大脑皮层神经干细胞的分离培养、分化及鉴定在NSCs培养液中加入10%胎牛血清3 h后，NSCs球即开始贴壁和分化，6 h后即可明显发现有突起从团块边缘长出,24 h后有少数细胞分化为有突起的细胞,以后分化的细胞逐渐增多,从细胞球周围迁移出,呈放射状排列（图3）；随着时间的推移,突起不断增粗与延长并互相连接成网状,7 d时在相差显微镜下NSCs球周围可见分化成胞体圆形丰满的神经元样细胞和突起粗大的胶质细胞样细胞。免疫荧光染色显示，在胎牛血清的诱导分化下NSCs能分化成表达各种相应特异性标志的终末细胞，即表达MAP2的神经元（图4）、表达GFAP的星形胶质细胞（图5）；同时，从NSCs分化而来的神经元能表达突触素（图6）。
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8 _5 O P/ t3 V) M: I+ i) Q 3讨论
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) ?: H5 z; U) V$ V9 ]: y, P NSCs是指在哺乳动物中枢神经系统内具有多向分化潜能和自我复制能力的一群细胞，由于具有广阔的应用前景而受到神经科学领域众多研究者的关注，在治疗恶性胶质瘤、神经系统损伤、中枢神经系统慢性退行性疾病（帕金森病、亨廷顿病）等方面已取得丰硕的成果[6～8]。/ {) j! F: s! |7 P9 W1 k
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NSCs在哺乳动物中枢神经系统内分布非常广泛，本实验从大脑皮层取材，采用机械分离法来制备NSCs悬液，实验效果比较理想。NSCs悬液的制备有酶消化法和机械分离法，但以酶消化法使用居多。由于在实际操作中很难从客观上准确地把握酶作用的最佳时间点，往往导致消化不足而不易获得单细胞悬液；或消化过度造成细胞受损而导致细胞活力下降甚至死亡。并且，在NSCs表面具有针对许多神经生长因子的受体[9],当采用酶消化法来获取NSCs时, 可能会引起细胞表面受损而致使一部分受体丢失,而这些受体对于NSCs 维持其干细胞的未分化状态是必需的。所以采用显微解剖和吸管吹打等机械分离方法来制备NSCs悬液是神经干细胞分离中较为理想的方法。
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本实验发现在原代培养时，培养瓶中可见大量的细胞碎片和一些贴壁的细胞，但经传代3～5代后，这些杂质逐渐减少甚至消失。这主要是由于培养液中所含的bFGF只对NSCs具有促进分裂和增殖作用[10,11],而其他杂细胞在该培养液中无法生长。因此，原代细胞中大部分非NSCs会发生死亡,而NSCs不仅可以存活,还可以分裂和增殖,形成神经干细胞球，从而经过多次传代后, NSCs可以得到纯化。' r1 h) ?- D# A( U
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: U7 k" q0 p! q7 e Nestin是神经干细胞的一个标志物，本实验培养的细胞通过免疫荧光观察培养的细胞球均呈Nestin免疫反应阳性，提示组成细胞球的细胞为NSCs。当在培养液中加入10％的胎牛血清后，NSCs可以分化为神经元样细胞和胶质细胞样细胞。免疫荧光显示，诱导分化7 d后NSCs可以分化为表达MAP2的神经元和表达GFAP的星形胶质细胞，证明了NSCs具有多向分化潜能。同时,本研究观察到从NSCs诱导分化成的神经元突起上有分化较好的串珠样排列的膨体,突触素免疫荧光染色阳性，显示其已经具备接受信息的结构基础,表明分化的神经元能够合成和运输神经递质,行使可能的生理功能[12]。7 ]$ i* ^; k' \
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/ L. m; T) H" d: l( j3 U, o+ x 实验从孕14 d胎鼠大脑皮层分离培养的细胞团具备NSCs的三大特征：Nestin免疫反应阳性、分裂增殖能力和多向分化潜能，由此证明了所分离培养的细胞是NSCs。并且，由血清诱导分化而来的神经元具备一定的生理功能，可以用于进一步的实验研究。+ q- B, N& H* ~% d( S
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发表于 2009-3-3 12:37
发表于 2009-4-19 08:18
