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细胞培养常见问题分析,献给刚接触细胞培养的小伙伴 [复制链接]

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发表于 2016-8-4 14:15 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
细胞培养常见问题分析
* y/ T( @) ^2 z7 _) [; z: S1、冷冻管应如何解冻? % Y  W; N$ E+ L; X8 _
取出冷冻管后, 须立即放入37 ℃水槽中快速解冻, 轻摇冷冻管使其在1 分钟内全部融化, 并注意水面不可超过冷冻管盖沿, 否则易发生污染情形。另冷冻管由液氮桶中取出解冻时, 必须注意安全, 预防冷冻管之爆裂。 - @) }9 A" ~% T" k! t- H5 w: j
2、细胞冷冻管解冻培养时, 是否应马上去除DMSO?0 J4 m! N/ }; o, j, u8 S
除少数特别注明对DMSO 敏感之细胞外, 绝大部分细胞株(包括悬浮性细胞), 在解冻之后, 应直接放入含有10-15ml新鲜培养基之培养角瓶中, 待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可, 如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。 / P+ x: B3 A& I( O1 A: B5 }
3、可否使用与原先培养条件不同之培养基?
5 }4 o) _2 A, r不能。每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基, 若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基, 细胞大都无法立即适应, 造成细胞无法存活。 , W7 J! {# c, |  Q
4、可否使用与原先培养条件不同之血清种类?* Z; |! [8 ?+ y$ I3 M
不能。血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源, 所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。来自不同物种的血清, 在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同,血清使用错误常会造成细胞无法存活。 : @. F0 l7 H- ?4 {3 G& w
5、何谓FBS, FCS, CS, HS ? , P6 d3 X3 @0 p* S3 R
FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思, 两者都是指胎牛血清, FCS 乃错误的使用字眼, 请不要再使用。CS (calf serum) 则是指小牛血清。HS (horseserum) 则是指马血清。 3 {! ~" I% ^" w1 s- D
6、培养细胞时应使用5 % 或10% CO2?或根本没有影响?
, T, _+ s* r% ]' H7 q; p) A+ J一般培养基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作为pH 的缓冲系统, 而培养基中NaHCO3 的含量将决定细胞培养时应使用的CO2 浓度。当培养基中NaHCO3 含量为每公升3.7 g 时,细胞培养时应使用10 % CO2;当培养基中NaHCO3 为每公升1.5 g 时, 则应使用5 % CO2 培养细胞。 - N6 b4 R: T. v6 l# O- e$ k
7、何时须更换培养基? ) t7 w" J  Y# F. h
视细胞生长密度而定, 或遵照细胞株基本数据上之更换时间,按时更换培养基即可。 / J3 i9 j: t" V; ^' {
8、培养基中是否须添加抗生素?
) t: h9 S, X) h9 @1 x除于特殊筛选系统中外, 一般正常培养状态下, 培养基中不应添加任何抗生素。
# R0 ?4 H9 e; o8 D, q9 b/ {- r1 |9、附着性细胞继代时所使用之trypsin-EDTA 浓度?应如何处理? # y, ^0 P+ ^3 \9 k/ c
一般使用之trypsin-EDTA 浓度为0.05% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中, 保存于–20 ℃,避免反复冷冻解冻造成trypsin 之活性降低, 并可减少污染之机会。 ! L/ N& c! J/ A' `
10、悬浮性细胞应如何继代处理?
. I  L* Y2 F3 P! m0 L2 j" o一般仅需持续加入新鲜培养基于原培养角瓶中, 稀释细胞浓度即可, 若培养液太多时, 可将培养角瓶口端稍微抬高, 直到无法容纳为止。分瓶时取出一部份含细胞之培养液至另一新的培养角瓶, 加入新鲜培养基稀释至适当浓度, 重复前述步骤即可。
2 V/ o8 t5 g) I11、欲将一般动物细胞离心下来,其离心速率应为多少转速?/ I1 P( ?: `8 d- S0 ~
欲回收动物细胞, 其离心速率一般为300xg (约1,000rpm),5 - 10 分钟, 过高之转速, 将造成细胞死亡。 4 P2 D$ v' r7 N! n' m" t( g
12、细胞之接种密度为何? 7 w0 j9 C+ f: S5 `$ p& w
依照细胞株基本数据上之接种密度或稀释分盘之比例接种即可。细胞数太少或稀释的太多亦是造成细胞无法生长之一重要原因。 2 |, ~4 ]$ m2 P: S
13、细胞冷冻培养基之成份为何?
/ ?2 l! y; T- o( D" t8 _, n动物细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含5 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90 - 95 % 原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。注意:由于DMSO 稀释时会放出大量热能, 故不可将DMSO 直接加入细胞液中, 必须使用前先行配制完成。 $ x9 a# S+ j0 D' ?- N* i& E* ~
14、DMSO 之等级和无菌过滤之方式为何? # Y5 r( j) C4 _
冷冻保存使用之DMSO 等级, 必须为Tissue culture grade之DMSO (如Sigma D2650), 其本身即为无菌状况, 第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中, 保存于4°C, 避免反复冷冻解冻造成DMSO 之裂解而释出有害物质, 并可减少污染之机会。若要过滤DMSO, 则须使用耐DMSO 之Nylon 材质滤膜。
8 Q7 c; W+ i( K* Y9 S15、冷冻保存细胞之方法? 5 l/ r( Y5 [1 \. k' S! }- k
冷冻保存方法一: 冷冻管置于4℃ 30~60 分钟→ (-20 ℃30 分钟*) → -80 ℃16~18 小时(或隔夜) → 液氮槽vaporphase 长期储存。 0 e! {  U8 P* B, g# r( n+ }
冷冻保存方法二: 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降1-3 ℃ 至–80 ℃ 以下, 再放入液氮槽vapor phase长期储存。*-20 ℃不可超过1 小时, 以防止冰晶过大,造成细胞大量死亡,亦可跳过此步骤直接放入-80℃ 冰箱中,惟存活率稍微降低一些。 1 L3 y( n/ _9 ~9 U
15、细胞欲冷冻保存时, 细胞冷冻管内应有多少细胞浓度?
# l: p. Z, o2 ]7 H& ^: c3 K冷冻管内细胞数目一般为1x106 cells/ml vial, 融合瘤细胞则以5x106 cells/ml vial 为宜。
0 [6 x# y; i/ r7 I+ h- f16、应如何避免细胞污染?
. \8 X% w& ^+ V$ ^细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉浆菌。主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。严格之无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染之最好方法。
3 I" a4 C" G% k1 X5 |  V17、如果细胞发生微生物污染时,应如何处理? " S; I; b; h1 e: x6 y
加入相应抗生素。直接灭菌后丢弃之。
$ q% M! l+ L, d3 O18、支原体(mycoplasma) 污染的细胞, 是否能以肉眼观察出异状? 9 o5 {' {2 Q: A0 w( M, T$ z; ^
不能。除极有经验之专家外,大多数遭受支原体污染的细胞株,无法以其外观分辨之。
8 j! P( A4 G8 C: U( L3 S$ M1 ], j19、支原体污染会对细胞培养有何影响?
9 ~( D( u: t3 m9 v支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数, 代谢及研究之任一数据。故进行实验前,必须确认细胞为mycoplasma-free,实验结果之数据方有意义。, `- n; w/ Q, r' U3 X2 N* k
20、CO2 培养箱之水盘如何保持清洁?
/ @" [" ?$ D" d5 L2 k5 c定期(至少每两周一次) 以无菌蒸馏水或无菌去离子水更换之。   j8 S" k; q  M
21、为何培养基保存于4 ℃ 冰箱中, 颜色会偏暗红色, 且pH值会越来越偏碱性?
4 ?9 i# D& M/ O1 t1 i" E/ f培养基保存于4 ℃ 冰箱中, 培养基内之CO2 会逐渐溢出,造成培养基越来越偏碱性。而培养基中之酸碱指示剂(通常为phenol red) 的颜色也会随碱性增加而更偏暗红。培养基偏碱之结果, 将造成细胞生长停滞或死亡。若培养基偏碱时, 可以通入无菌过滤之CO2, 以调整pH 值。
; G) Y3 o2 D( e* }22、各种细胞培养用的dish,flask是否均相同?5 k% V: ]7 U3 V4 T, \
不同厂牌的dish 或flask, 其所coating 的polymer 不同, 制造程序亦不同, 虽对大部分细胞没有太大之影响, 惟少数细胞则可能因使用厂牌不同之dish 或flask 而有显著之生长差异。 - b. F$ Y$ n) ?, Z
23、购买之细胞冷冻管经解冻后,为何会发生细胞数目太少之情形? 购买之细胞死亡或细胞存活率不佳可能原因? " E- q+ _5 D& s0 E/ u$ v" e9 v, q
研究人员在细胞培养时出现存活率不佳, 常见原因可归纳为:培养基使用错误或培养基品质不佳。血清使用错误或血清的品质不佳。解冻过程错误。冷冻细胞解冻后, 加以洗涤细胞和离心。悬浮细胞误认为死细胞。培养温度使用错误。细胞置于–80℃太久。 : d" i3 y# d1 p$ H* e" G
24、收到之冷冻管瓶身破裂,瓶盖有裂纹,或瓶盖脱落之原因?: m; s! w& w0 Q, x6 F
冷冻管瓶盖裂纹,或瓶身破裂,可能是因为操作者夹取冷冻管时用力不当,造成冷冻管裂损,建议使用止血钳小心夹取。另冷冻管瓶盖松动或松脱,乃因热胀冷缩之物理现象,冷冻管有可能因此而造成细胞污染,故冷冻管于放入和取出液氮桶时,均应立刻将冷冻管再一次扭紧 。- t- N9 b1 E: N3 e7 i7 t" {
25、如何选用特殊细胞系培养基? 3 P- e% [, `3 o" q" l' [' |" t
培养某一类型细胞没有固定的培养条件。在MEM中培养的细胞,很可能在DMEM或M199中同样很容易生长。总之,首选MEM做粘附细胞培养、RPMI-1640做悬浮细胞培养是一个好的开始,各种目的无血清培养最好首选AIM V(12005)培养基(SFM)。 ; r2 X6 r5 X* M
26、L-谷氨酰胺在细胞培养中重要吗?它在溶液中不稳定吗? . C5 X4 w( z( ^( y  p  h4 s
L-谷氨酰胺在细胞培养时是重要的。脱掉氨基后,L-谷氨酰胺可作为培养细胞的能量来源、参与蛋白质的合成和核酸代谢。L-谷氨酰胺在溶液中经过一段时间后会降解,但是确切的降解率一直没有最终定论。L-谷氨酰胺的降解导致氨的形成,而氨对于一些细胞具有毒性。
/ Q- x% r8 o2 ]/ W27、GlutaMAX-I是什么?培养细胞如何利用GlutaMAX-I?这个二肽有多稳定?
0 a2 o; z3 k* {: m0 Y5 SGlutaMAX-I 二肽是一个L-谷氨酰胺的衍生物,其不稳定的alpha-氨基用L-丙氨酸来保护。一种肽酶逐渐裂解二肽,释放L-谷氨酰胺供利用。 GlutaMAX-I二肽非常稳定,即使在121磅灭菌20分钟,GlutaMAX-I 二肽溶液有最小的降解,如果在相同条件下,L-谷氨酰胺几乎完全降解。
5 b1 t" v$ N' B( d& Q. u. Q28、什么培养基中可以省去加酚红? ! I9 E6 f: z( V- ^5 V( b
酚红在培养基中被用来作为PH值的指示剂:中性时为红色,酸性时为黄色,碱性时为紫色。研究表明,酚红可以模拟固醇类激素的作用,(特别是雌激素)。为避免固醇类反应,培养细胞,尤其是哺乳类细胞时,用不加酚红的培养基。由于酚红干扰检测,一些研究人员在做流式细胞检测时,不使用加有酚红的培养基。 5 ?/ B! l' e6 M; S. N7 C
29、培养基中丙酮酸钠的作用是什么?8 b8 t9 ?, m" Q. t
丙酮酸钠可以作为细胞培养中的替代碳源,尽管细胞更倾向于以葡萄糖作为碳源,但是,如果没有葡萄糖的话,细胞也可以代谢丙酮酸钠。
$ _& V8 V  m' d* k8 Z30、二价离子抑制胰蛋白酶活性吗?使用胰蛋白酶时加入EDTA的目的是什么?
- m) W: A9 \! s4 a2 V3 y+ B二价离子的确抑制胰蛋白酶活性。EDTA用来螯合游离的镁离子和钙离子,以便保持抑制胰蛋白酶的活性。建议胰蛋白酶处理细胞前,用EDTA清洗细胞,以消除来自培养基中所有的二价离子。 - V( ~$ ~' s& z" Q
31、书上说,Hank‘s 平衡盐溶液(HBS)要在空气中使用,不需要CO2培养箱。原因是什么?Hank’s 平衡盐溶液(HBS)和Earle‘s平衡盐溶液(EBS)有什么本质的功能差别?
3 z, K* u+ w' A* Y' }HBS和 EBS 的主要差别在于碳酸氢钠的水平,在Eagles (2.2g/L)中比在Hanks (0.35g/L) 中高。碳酸氢钠需用高水平的CO2平衡,以维持溶液的PH值。Eagles液在空气水平的CO2 中,溶液会变碱,Hanks液在CO2培养箱中会变酸。如果希望在CO2培养箱中保存组织,需要用Eagles液,。如果仅仅是清洗将要在细胞培养基中储存的组织,用Hanks液就可以了。1 T' ?! A; m$ J/ m# u* H+ ?# B+ X* ~
血清
2 X$ [0 ]$ Z' b1 U+ g1、保存血清最好的方法?7 Z% a# V( e  D6 r8 S/ D2 k8 y
建议血清应保存在-5℃至-2O℃。然而,若存放于4℃时,请勿超过一个月。若您一次无法用完一瓶,建议您无菌分装血清至恰当的灭菌容器内,再放回冷冻。
6 u1 E+ f; \9 k, `6 Z% P2、如何解冻血清才不会使产品质量受损?
2 J, C& @& p% g" X5 l! X( `建议您将血清从冷冻箱取出后,先置于2~8℃冰箱使之融解,然后在室温下使之全融。但必须注意的是,融解过程中必须规则地摇晃均匀。' |, i: N; n% c0 `( t9 I: L
3、血清解冻后发现有絮状沉淀物出现,该如何处理?* v6 T5 D- X. _0 W, j) I$ V% }, c4 x
血清中沉淀物的出现有许多种原因,但最普遍的原因是由于血清中脂蛋白的变性所造成,而血纤维蛋白(形成凝血的蛋白之一)在血清解冻后,也会存在于血清中,亦是造成沉淀物的主要原因之一。但这些絮状沉淀物,并不影响血清本身的质量。若欲去除这些絮状沉淀物,可以将血清分装至无菌离心管内,以400g稍微离心,上清液即可接着加入培养基内一起过滤。我们不建议您以过滤的方法去除这些絮状沉淀物,因为它可能会阻塞您的过滤膜。
2 ~5 q% t; g- F4、为什么要热灭活血清?
3 j1 s  a* r/ _6 h加热可以灭活补体系统。激活的补体参与溶解细胞事件,刺激平滑肌收缩,细胞和血小板释放组胺,激活淋巴细胞和巨噬细胞。在免疫学研究,培养ES细胞,昆虫细胞和平滑肌细胞时,推荐使用热灭活血清。
1 c1 _( i! W& Q# q6 l5、有必要做热灭活吗?
3 p/ a# S- z  t( U% A4 Z/ X! _实验显示,经过正确处理的热灭活血清,对大多数的细胞而言是不需要的。经此处理过的血清对细胞的生长只有微小的促进,或完全没有任何作用,甚至通常因为高温处理影响了血清的质量,而造成细胞生长速率的降低。而经过热处理的血清,沉淀物的形成会显著的增多,这些沉淀物在倒置显微镜下观察,像是“小黑点”,常常会让研究者误以为是血清遭受污染,而把血清放在37℃环境中,又会使此沉淀物更增多,使研究者误认为是微生物的分裂扩增。
$ V' ?: H" o% h5 Z) o+ g6、为什么储存在冰箱中的胎牛血清会出现沉淀?: l% k8 o+ M% Q+ \
GIBICO的胎牛血清 没有预老化,储存在2-8℃时,血清中的各种蛋白和脂蛋白(如冷凝集素、纤维蛋白原、玻粘连蛋白等)可能聚集而形成沉淀或可见的混浊。这应该不会影响血清的质量。推荐在-20℃储存胎牛血清,避免反复冻融。
2 w' ^4 t: x9 v9 H: @7、如何避免血清里沉淀物的产生?
9 \+ a4 ~6 Z5 p解冻血清时,请按照所建议的逐步解冻法(-20℃至4℃至室温),若血清解冻时改变的温度太大(如-20℃至37℃),实验显示非常容易产生沉淀物。) N& G" ~$ B3 R( _. g& r5 ?% h
解冻血清时,请随时将之摇晃均匀,使温度及成分均一,减少沉淀的发生。请勿将血清置于37℃太久。若在37℃放置太久,血清会变得混浊,同时血清中许多较不稳定的成分也会因此受到损害,而影响血清的质量。
$ c0 s: x: q! h8 q血清的热灭活非常容易造成沉淀物的增多,若非必要,可以无须做此步骤。若必须做血清的热灭活,请遵守56℃,30分钟的原则,并且随时摇晃均匀。温度过高,时间过久或摇晃不均匀,都会造成沉淀物的增多。2 A( ]. x+ P' d. g
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细胞海洋 + 2 + 10 极好资料

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沙发
发表于 2018-7-11 10:58 |只看该作者
很好的资料,谢谢" q) A2 F  ~" ]' H9 }. E% X& n
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