循环肿瘤细胞（CTC）的检测策略!

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循环肿瘤细胞（CTC）的检测策略!# A& z0 _( c' S5 W& c
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癌症是不可预测的。肿瘤在初次治疗后缩小，但之后可能变得更加可怕。这种疾病可能扩散，也可能突变，而遗传改变使得癌症对治疗方案更加敏感，或恰恰相反。肿瘤学家通常依赖侵入性的活组织检查和非侵入性的成像手段来追踪肿瘤的大小、扩增以及对治疗的响应。然而，循环肿瘤细胞（CTC）带来了一种前途光明的新方法。在此，我们回顾一下分离和研究这些肿瘤风向标的方法。
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CTC定义+ Q9 A, B, l# Z, N2 O! i: K
循环肿瘤细胞是指从肿瘤上脱落并进入循环系统的癌细胞，在那里它们可以通过简单的血液检测来发现。这些细胞可作为癌症的生物标志物，指示远端是否存在肿瘤，以及它们的遗传状况和药物敏感性。与手术干预不同，CTC与纵向研究兼容，能够有效指导治疗。然而，要理解它们的意义，也没那么简单。  c5 e( c% k$ ~6 Y! c' q/ Z
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CTC，与肿瘤本身一样，是高度异质性的，加州大学旧金山分校的解剖学教授Zena Werb如是说。一些CTC有能力产生新的肿瘤，而另一些则没有。一些表现出癌症干细胞的特性，而另一些则不是。目前，美国FDA批准的唯一一种CTC临床检测是杨森诊断公司（Janssen Diagnostics）的CellSearch，它能有效定义上皮来源的CTC，即EPCAM、DAPI和细胞角蛋白阳性，而CD45阴性。8 `8 y/ r8 l6 j+ x# ]& e
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' g9 {) M0 f- ]& _2 X' X7 T5 m3 A# E9 ?4 O当然，并非所有肿瘤都来源于上皮细胞，甚至上皮肿瘤也可能逐渐丧失上皮标志物（CellSearch被批准用于转移性乳腺癌、结肠直肠癌和前列腺癌）。而且有迹象表明，除了癌症，炎症也可能导致血液中存在上皮细胞。Werb认为，这个故事比我们想象的要复杂得多。
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据杨森诊断公司的研发部门主管Ron Mazumder介绍，血液中存在可检测CTC的患者比例随癌症类型的不同而不同。比如，结肠直肠癌、卵巢和乳腺癌大约是50-70%，而非小细胞肺癌则低至30%。这些患者体内的CTC数量也相差甚远，从单个细胞到几千个。“中位数大约是二、三十个细胞，”Mazumder谈道，但他们发现，转移性乳腺癌和前列腺癌患者中每7.5 ml血液中有五个CTC或以上的，预后情况要比CTC较少的患者糟糕得多。因此，五个被设为临界值 – 如果CTC的数量更多或更少，这对患者生存有着显著的影响，而且在多个癌症类型中都是如此。) I- f3 K/ n0 G4 Y6 a( ~
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微流体选择
7 J( Z$ n$ p; D7 C8 r; f5 R& F原先，CellSearch完全依靠细胞计数。如今，用户也能获得这些细胞的遗传信息。2014年8月，杨森宣布与Asuragen建立伙伴关系，对分离出的CTC开展新一代测序，以鉴定几百个癌症相关基因中的突变。. L. ^$ ?: r: X% x$ |; T

! K7 x6 L9 S( i: d, jCELLSEARCH是基于阳性选择，利用抗体包被的磁珠来捕获EPCAM阳性的细胞，然后成像并计数。因此，麻省总医院癌症研究中心的助理教授Shannon Stott认为，你需要预先知道你要寻找的细胞的特性。然而，并非所有CTC都有着相同的物理和生物学性质。. N" B2 w8 ?' v$ A8 L; b% \
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Stott有着机械工程的背景，与几位同事合作，她开发出分离CTC的新方法。2010年，她开发出一种“人字形CTC芯片”，利用EpCAM抗体来捕获CTC [1]。她表示，这种设计能够比较快速地处理血液（每小时2 ml），且具有良好的灵敏度和选择性。不过，它无法解释不同的抗原谱。而捕获的细胞粘在芯片表面，使得后续培养成为问题。, s, ^) W' |* a+ o2 A" R
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2013年，麻省总医院的团队开发出第三代的技术，称为CTC¬ICHIP [2]。这个ICHIP中的I代表惯性聚焦（INERTIAL FOCUSING），即通过流体作用力将细胞排成一列纵队。芯片利用流体力学分选，去除最小的血液成分。然后， 它利用正向选择来去除淋巴细胞，保留剩下的一切。6 @5 M8 O! b$ t" ?, k; P/ [

# h& R2 ~1 G2 S; X据Stott介绍，iChip比人字形芯片要快得多，每小时能处理20 ml血液。它还能产生未标记的细胞，便于培养和分析。她的同事Daniel Haber的团队从六位乳腺癌患者中建立了CTC细胞系 [3]。对这些细胞系的测序鉴定出 新获得的突变和药物敏感性，这些信息能帮助开发更好的治疗策略。在另一项研究中，Haber的团队对分离出 的CTC开展单细胞RNA-seq，并将它们与同一位患者的CTC聚集体进行比较，以了解这些成簇CTC结构的性质 [4]。与单独的CTC相比，成簇的CTC有着更大的转移潜力。分析鉴定出一个细胞连接相关基因，称为 plakoglobin。: r2 b- R# {+ t8 @' a; J0 I* T0 n

* H0 t: s. H: s2 j( `目前，杨森诊断公司正与麻省总医院的团队合作，希望将iChip转化成新一代的CTC分析平台。! u' _: M$ U8 N2 A! B
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CTC成像( C( G, ]! _) ~
《Nature Reviews Clinical Oncology》上的一篇文章回顾了CTC分析和鉴定的原理 [5]。文章中有一个表格， 列出了精选的检测技术，其中大部分是基于CTC的抗原谱或物理性质。表格中提到的一种替代策略是图像流式细胞仪，这种方法由默克密理博商业化。! @# F) \. P2 s9 l; V) p; u

$ Z: U% K* _& G( aIMAGESTREAM和FLOWSIGHT都是图像流式细胞仪，本质上就是带有照相机的流式细胞仪。随着每个细胞通过， 它在明场和暗场模式以及多达10个荧光通道下成像，产生每个细胞的12幅图像，且每秒能成像2,000个细胞。 这两个平台之间的差异是ImageStream能放大到60倍，而FlowSight提供固定的20倍放大。3 d$ J7 v  h! Q) p

  @. H- Y9 ~# c# W" h; r尽管所得到的细胞无法培养，但是当细胞通过系统时，用户也能开展各种分析。例如，他们可以对细胞外和细 胞内标记进行染色，以确定细胞的来源，或者用RNA¬FISH探针染色，对转录本进行计数。5 z7 S. j' i+ g+ I3 z" ~; D
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当然，传统的流式细胞仪也能获得许多参数，而图像流式细胞仪能为你带来自信，这少少的阳性细胞正是 CTC。“眼见为实，”默克密理博细胞分析的高级总监David Basiji说道。如今，这家公司正在努力实现CTC的分 离，便于下游研究的开展。9 v' M! U0 ^" N$ _- C/ {8 T& l
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参考文献& R6 X- s2 C8 J$ `5 h0 I
1.Stott, SL, et al., “Isolation of circulating tumor cells using a microvortex¬generating herringbone¬chip,” Proc Natl Acad Sci USA, 107:18392–7, 2010. [PubMed: 20930119]2 f- V! J" d2 w, j! Q: R9 y
2.Ozkumur, E, et al., “Inertial focusing for tumor antigen¬dependent and –independent sorting of rare circulating tumor cells,” Sci Transl Med, 5:179ra47, 2013. [PubMed: 23552373]0 }, k. a3 {7 W0 s  l" ]5 W
3.Yu, M, et al., “Ex vivo culture of circulating breast tumor cells for individualized testing of drug susceptibility,” Science, 345:216–220, 2014. [PubMed: 25013076]
) a+ ?, i4 d9 p1 S- F4.Aceto, N, et al., “Circulating tumor cell clusters are oligoclonal precursors of breast cancer metastasis,” Cell, 158:1110–22, 2014. [PubMed: 25171411]+ R: p4 |: ~" V$ h6 O; D% a
5.Krebs, MG, et al., “Molecular analysis of circulating tumour cells—biology and biomarkers,” Nat Rev Clin Oncol, 11:129–44, 2014. [PubMed: 24445517]
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: i0 c2 S9 s2 P) u3 b; r: I" T9 B原文网址：http://www.biocompare.com/Editor ... lating-Tumor-Cells/3 P  E4 D1 i6 D

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Clin Chem：基于CTC计数的CellSearch/CSV联合法或可有效监测乳腺癌疗效
- U9 H# x0 ?, y! T) `# l2015-01-15 来源：Alabmed  作者：leehao译  编辑：akane, y' k" J% l2 B1 D2 b$ g
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导读
$ j, e2 D& I% `& Z4 }9 f7 \+ P近日发表在《临床化学》（Clinical Chemistry）的一篇文章中，来自德克萨斯大学生物医学科学研究生院的研究人员发现了在肉瘤中使用细胞表面波形蛋白（CSV）作为生物标记物，检测间叶CTC时具有; H. f; V+ r( V$ }
从癌症患者体内检测、分离、计数循环肿瘤细胞（CTC）已经成为乳腺癌患者临床管理的重要方法。尽管一种基于上皮细胞粘附分子(EPCAM)的上皮CTC 分离方法CELLSEARCH已经占据了主导地位，但是它不能检测到乳腺癌患者间叶细胞CTC，在临床管理中引发担忧。
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. p0 h4 ]: D3 T/ q" S% G- o! h, o为了解决这项技术上的瓶颈，近日发表在《临床化学》（Clinical Chemistry）的一篇文章中，来自德克萨斯大学生物医学科学研究生院的研究人员发现了，在肉瘤中使用细胞表面波形蛋白（CSV）作为生物标记物检测间叶CTC时，具有实用性。3 A" J! F; j3 J5 @$ g( V% q

: o# ^1 S$ e4 ]9 p# B9 y在目前的研究中，研究人员通过使用84-1（一种针对CSV的单克隆抗体，检测上皮/间叶转移的CTC）和CellSearch的方法测试了CTC检测的 灵敏性和特异性，血液来源于处在治疗过程中的58例浸润乳腺癌患者，收集的时间点是随机的。另外，试验同时也测试了通过使用其它参数（包括核EpCAM定位和上皮间叶比）提升检测灵敏性和特异性的可能性。& `+ M* U5 x, h9 `: N9 y
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结果显示，通过CSV获得的CTC计数在区分对治疗有效和无效的人群中有显著差异(P = 0.0053)，而通过CellSearch方法计数时的P值为0.0564。两种方法计数总和高于8 CTCs/7.5 mL的临界值时，CTC检测的特异性最高。/ [3 u/ h1 l. E; u$ J
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CellSearch和CSV方法的CTC计数总值，为疗效评价提供了新的见解，为乳腺癌患者个性化治疗提供了新途径。* R; y. T% j3 d2 ^
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信源地址：http://www.clinchem.org/content/61/1/259.abstract2 o" u/ b# X: o. s

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CTC循环肿瘤细胞是指从肿瘤上脱落并进入循环系统的癌细胞，