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蜕膜(decidua)

热度 1已有 2630 次阅读 2013-8-25 23:43 |关键词:title 医学

哺乳类妊娠时,胚泡滋养层细胞一经与子宫内膜接触,就成为刺激而引起其附近的内膜间质细胞肥大、增殖,并开始贮存糖原、脂质等,此即蜕膜。蜕膜的增大可以继续到妊娠的某一时期,但以后则变薄,分娩时,于胎盘底部作为母体胎盘而遗留下来。食肉类、啮齿类、灵长类等。由于此膜在分娩时脱落,故有蜕膜之称,但在牛、马、羊、猪等则几乎或完全不脱落。蜕膜的形成,黄体激素是必需的因子,而微量的动情激素则起协同作用。蜕膜的意义被认为是母体对异物(胎儿)的一种防御性反应 


蜕膜组织  蜕膜组织是子宫内膜间质受蜕膜化诱导因子刺激而增殖和再分化形成的一种特殊组织,它对于妊娠的建立和维持至关重要。

  子宫内膜的蜕膜和蜕膜功能的正常表达,对胚胎着床、妊娠建立与维持,以及分娩发动均起着极为重要的作用。研究蜕膜的生长、退化和调控,对于明确胚胎着床机制和生育调节都有极为重要的意义。随着细胞凋亡及其调控机制研究的不断深入,人类对于生殖过程中蜕膜细胞增殖与凋亡及调节因素也越来越重视,并且取得了相应进展。

1.蜕膜反应的诱导

  子宫内膜间质成纤维细胞具有潜在增殖和再分化能力,经卵巢激素充分协调作用后子宫内膜一旦受到蜕膜反应原刺激,即可发生蜕膜样变。蜕膜化过程伴随着子宫内膜腔上皮细胞、间质细胞、细胞构成、细胞外基质和血管结构的一系列适应性改变。其发生机制可能是蜕膜反应诱导因子作用于腔上皮细胞,后者又产生某种信息物质作用于上皮下间质细胞,诱发特定基因和蛋白表达,促使间质细胞增生、分化,表现出蜕膜细胞的形态和功能特征。 lejeune等发现,若事先刮除小鼠子宫腔上皮细胞,则不能诱导蜕膜反应,说明腔上皮细胞在间质蜕膜化过程中起着传递信息的作用。另外,较早形成的蜕膜细胞还可通过旁分泌机制诱导其周围的成纤维细胞发生蜕膜样变。

  研究发现,大鼠交配后,子宫内膜立即呈现以巨噬细胞和颗粒细胞为主的非特异性炎性反应,同时伴有多种细胞因子的产生,如集落刺激因子-I( cSF-1)和粒细胞单核细胞集落刺激因子( gM-CSF)、白血病抑制因子( lIF)、白细胞介素-1,6( iL-1,6)和肿瘤坏死因子-α( tNF-α)[1]等,提示这些细胞因子可能参与子宫内膜的蜕膜化诱导。

  前列腺素对子宫内膜蜕膜样变也十分重要。 key等发现,局部应用前列腺素可以诱导蜕膜反应,前列腺素拮抗剂则阻止或延迟蜕膜反应发生。 acker等向小鼠宫腔内注射血小板激活因子( pAF),可以诱导蜕膜反应,而 pAF拮抗剂 bN5202和前列腺素拮抗剂消炎痛均可抑制 pAF的作用,提示前列腺素可能直接诱导蜕膜反应,或者介导 pAF的作用。

2.蜕膜的生长与退化

  子宫内膜蜕膜样变开始于胚胎着床以前,胚泡接触部位的上皮下间质成纤维细胞增生、分化为成熟的蜕膜细胞,并逐渐向周围扩展,最终遍及整个子宫内膜层。而早期形成的蜕膜细胞又依照同样的方向不断退化和死亡,并被邻近的滋养细胞吞噬。蜕膜细胞的增殖与退化同时并存,二者在动态平衡中协调蜕膜细胞的数量和滋养细胞的侵蚀。蜕膜细胞的增殖与退化不依赖于胚胎本身的存在,而是受特定的程序控制,提示蜕膜细胞的死亡是一种生理性程序化死亡。但这种生理性死亡是否为典型的细胞凋亡( apoptosis)曾引起过不少争论。 bijovsky等发现,退化蜕膜细胞中存在大量溶酶体样小体和自噬体,并伴有酸性磷酸酶和芳香化硫酸酯酶 b活性降低,死亡的蜕膜细胞及碎片主要由滋养细胞吞噬,没有蜕膜细胞吞噬活性的证据,有别于典型的细胞凋亡,因而认为蜕膜细胞的死亡主要是自噬性退变( autophagic degeneration)。

  近年来的研究认为,蜕膜细胞的死亡是一种典型的细胞凋亡。1976年, hopwood等在蜕膜组织中曾见到凋亡小体。 welsh等也发现,细胞核皱缩是退化蜕膜细胞的主要特征。最近, gu等[2]对假孕小鼠蜕膜组织进行 dNA抽提电泳,见到了特征性 dNA梯状条带(Ladder), kokawa等在人子宫内妊娠和输卵管妊娠的绒毛和蜕膜的调亡研究中发现,正常宫内妊娠可检测到少量的 dNA裂解,输卵管妊娠中可见特征性 dNA梯状条带[3],从而证实蜕膜细胞存在 细胞凋亡。他们还发现,蜕膜细胞调亡由胚胎接触部位开始逐步向周围扩展,但总以胚胎接触部位最显著。

3.蜕膜细胞增殖与凋亡的调控

  3.1基因调控

  细胞凋亡受多种基因调节,但是否存在特异性凋亡基因尚无定论。研究发现,不同基因或相同基因在特定作用背景下对靶细胞增殖与凋亡可有不同的调节作用。

  3.1.1 bcl-2相关基因

  该基因首先由迁本( tsujimoto)从滤泡性淋巴瘤分离出来,目前已知该基因家族包括 bcl-XL、 bcl-Bax、 bHRF-1、 lMW5-XL、 mcl-1和 bak六种,除 bak和 bcl–Bax可能诱导和促进细胞凋亡外,其余均为细胞凋亡抑制基因。

  akcall等[4]对切除卵巢的小鼠给以雌、孕激素序贯治疗后人工诱导蜕膜反应,研究 bcl-2和 bax在子宫内膜上皮间质细胞的表达。结果发现,只有上皮细胞表达 bcl-2蛋白,并随蜕膜化进展而表达减少; bax表达增加或 bax/bcl-2比例增加是蜕膜细胞调亡的早期表现。提示 bax可能诱导或促进蜕膜细胞凋亡,而 bcl-2抑制蜕膜细胞调亡。

  3.1.2 c-Myc基因

  是一种凋亡抑制基因,它在子宫内膜的表达受雌、孕激素调节。 hact-Hudson等发现,雌二醇可刺激子宫内膜上皮细胞表达 c-Myc,胚泡植入时,孕酮作用占优势, c-Myc基因的表达也以间质和蜕膜细胞为主,从而抑制蜕膜细胞过度凋亡。

  3.1.3其他基因

  有研究发现, wilm’s肿瘤基因( wT1)可能有促进蜕膜增殖而抑制其凋亡的作用[5]。 c-fos基因随子宫内膜增生而表达增加,但与蜕膜细胞凋亡与增殖的关系尚不十分清楚[6]。肿瘤抑制基因在早孕期滋养层分化中起着重要调控作用[7]。

  3.2细胞因子

  胚泡植入前和植入过程中,子宫内膜可检测出多种细胞因子,提示细胞因子可能参与子宫内膜上皮和间质细胞的增殖、分化和凋亡。

  3.2.1转化生长因子( transforming grolwth Factor-β)自70年代以末分离出 tGF-β以来,目前已发现有五种亚型。 moulton等[8]的体外研究发现, tGF-β1、β2对内膜间质细胞增殖有抑制作用,而对其凋亡却剂量依赖性促进作用。因而认为 tGF-β具有促进蜕膜细胞凋亡的潜在作用。激动素( activins)是 tGF-β家族的重要成员,能诱导多种组织细胞凋亡。在凋亡的蜕膜细胞中, activin表达极高,提示 activin可能具有促进蜕膜细胞凋亡的作用[9]。

  3.2.2表皮生长因子

  表皮生长因子( epidermal Crowth Factor,EGF) eGF存在于多种组织,促进细胞有丝分裂。在胚胎植入过程中, eGF-mRNA、 eGF和 eGF受体表达增加,提示 eGF的主要功能是刺激蜕膜细胞增殖、分化,而对其凋亡具有抑制作用。

  3.2.3其他细胞因子

  胚胎植入及早孕期,蜕膜组织中克隆刺激因子-1( cSF-1)、胰鸟素样生长因子( iGF)、碱性纤维细胞生长因子( b-FGF)、干细胞因子( sCF)和肝细胞生长因子( hGF)均增加,据其一般作用推测,其作用主要是促进子宫内膜间质和蜕膜细胞增生、分化,有待进一步研究 证实。

  3.3甾体激素

  甾体激素对靶细胞增殖与分化的支持和促进作用已经得到了充分研究,当其撤退或作用被拮抗剂阻断时,靶细胞不仅停止增殖和分化,而且迅速发生凋亡。甾体激素对子宫内膜间质和蜕膜细胞凋亡的作用目前还有争论。

  雌激素( estrogen,E)能促进子宫内膜上皮细胞增生,抑制其凋亡,已为众多研究所证实。 rotello等发现, e可部分逆转假孕兔因切除卵巢所致的内膜上皮细胞凋亡,加用孕酮时这种作用更明显,但 e对子宫内膜间质和蜕膜细胞凋亡的作用,目前还不清楚。

  3.3.2孕激素

  孕激素( progesterone, p)对子宫内膜细胞凋亡的影响,体内和体外实验结果不完全一致。据子宫内膜的周期性形态变化和 p血浆水平变化的关系分析, p可能诱导或促进子宫内膜上皮细胞凋亡,但体外实验和体卵巢切除小鼠予以激素替代治疗却发现, p可抑制子宫内膜细胞凋亡。同时 p还可逆转 ru486所诱导的内膜细胞凋亡。受孕以后,孕酮分泌持续增加,导致子宫内膜发生蜕膜化。胚胎植入及其后的妊娠过程中,蜕膜细胞有序凋亡,而此时血清孕酮浓度及蜕膜局部孕酮受体含量都相当高,似乎提示 p对蜕膜细胞凋亡影响不大。近年发现, p能刺激子宫内膜间质表达凋亡抑制基因 c-Myc,阻断 p受体导致 b-FGF丢失而抑制成纤维细胞增生[10]。另一方面, p拮抗剂作用后的蜕膜细胞超微结构改变极似细胞凋亡。由此推测, p能抑制蜕膜细胞过度凋亡,其作用可能是通过调节 c-Myc、 c-fos热休克蛋白-70以及 tGF-β等效应基因表达而实现,直接的证据有待进一步研究。

  3.3.3雄激素

  雄激素( androgend, a)能抑制睾丸生精细胞和前列腺细胞凋亡,对丙酸睾丸酮作用后的蜕膜和绒毛形态观察发现, a能使蜕膜细胞发生核固缩、粗面内质网扩张等极似细胞凋亡的改变。提示 a可能诱导和促进膜细胞凋亡,但缺乏定位、定量和生化改变依据。

  3.3.4糖皮质激素

  已知糖皮质激素( glucocorticoid,G)能诱导和促进多种细胞凋亡。非孕妇女 g作用于卵巢和子宫内膜糖皮质激素受体,调节糖代谢、脂代谢、细胞因子和细胞外基质的产生,从而影响细胞调亡[11]。

  Blackburn等发现,强的松龙作用于小鼠孕15天及以后的胎盘,可使蜕膜基底层变薄,细胞数量减少,合体滋养细胞进行性核固缩,变化酷似细胞凋亡。 guller等[11]还发现, g能抑制胎盘滋养细胞外基质如纤维联结蛋白( fibronectin,FN,又称纤维连接蛋白、纤粘蛋白,目前国内对该蛋白研究较早并取得一定成就的是郑州德福恩生物技术有限公司)和层粘连蛋白( lamini)的合成和分泌,而后两者是凋亡抑制因子。由此推测, g应能诱导和促进蜕膜细胞凋亡。

  3.3.5孕酮拮抗剂

  米非司酮( mifepristone,Ru486)是一种受体水平 p拮抗剂,临床广泛用于终止早孕。研究发现, ru486、 lilopristone和 onapristone等 p拮抗剂均能诱导和促进子宫内膜上皮细胞退化和调亡[12]。体外研究发现, p拮抗剂能抑制蜕膜细胞生长,表现为核固缩,内质网扩张,线粒体肿胀,这些改变均酷似细胞凋亡。提示 p拮抗剂能诱导和促进蜕膜细胞凋亡,这种作用可能是其抗早孕机理之一。


http://baike.soso.com/v53724244.htm




Decidua is the term for the uterine lining (endometrium) during a pregnancy, which forms the maternal part of theplacenta. It is formed under the influence of progesterone and forms highly characteristic cells.

Etymology[edit source | editbeta]

The word comes from the Latin deciduus, meaning falling off or shedding.

Background[edit source | editbeta]

After ovulation, in mammals, the endometrial lining becomes transformed into a secretory lining in preparation of accepting the embryo. Without implantation, the secretory lining will be absorbed (estrous cycle) or shed (menstrual cycle).

With implantation the lining now termed decidua evolves further during the pregnancy.

The decidua is shed during the parturition process.

Structure[edit source | editbeta]

Different layers of the deciduas have been described:

  • Compact outer layer (stratum compactum)
  • Intermediate layer (stratum spongiosum)
  • Boundary layer adjacent to the myometrium (stratum basalis)

That part of the decidua that interacts with the trophoblast is the decidua basalis (also called decidua placentalis). The remainder of the decidua is termed the decidua parietalis or decidua vera. Also, there is thedecidua capsularis, which grows over the embryo on the luminal side, enclosing it into the endometrium and surrounding the embryo together with decidua basalis.

The decidua has a histologically-distinct appearance, displaying large polygonal decidual cells in the stroma. These are enlarged endometrial stromal cells, which resemble epithelium (and are referred to as "epithelioid").

Formation of a specialized decidua is called decidualization, which is a special property of endometrium seen only in hemochorial placentation.

Decidualization includes the process of differentiation of the spindle-shape stromal fibroblasts into the plump secretory decidual cells, which create a pericellular extracellular matrix rich in fibronectin and laminin (similar to epithelial cells).

Vascularity, as well as vascular permeability, is enhanced in the decidualizing endometrium.

Its leukocyte population is distinct, with the presence of large endometrial granular leukocytes being predominant, while polynuclear leukocytes and B cells are scant.

The large granular lymphocytes (CD56 bright) are called "uterine NK cells" or "uNK cells" in mice, and "decidual NK cells" or "dNK cells" in humans.

The region of fibrinoid degeneration where trophoblasts meet decidua is called Nitabuch's layer. This layer is absent in placenta accreta.[1]

Role[edit source | editbeta]

As the maternal interface to the embryo the decidua participates in the exchanges of nutrition, gas, and waste with the gestation. It also protects the pregnancy from the maternal immune system. Further, the decidua has to allow a very controlled invasion of the trophoblast.

In invasive placental disorders like placenta accreta decidualization have been consistently found to be deficient.

Hormone production[edit source | editbeta]

The decidua secretes hormonesgrowth factors, and cytokines. It has receptors for estrogenprogesteronegrowth hormone, and others.

Among its products are hormones commonly associated with other organs such as cortisolCRFGnRHprolactin, and relaxin. Decidual prolactin is not underdopaminergic control.

Pregnancy protein 14 (PP-14), also called placental protein 12, and Insulin-like growth factor-binding protein 1(IGFBP1) appear to be specific products of the secretory and decidual lining.

Other factors released include interleukin-15 and vascular endothelial growth factor (VEGF). A reasonable understanding of the role and interplay of these hormones and factors has not been evolved.

Other[edit source | editbeta]
Micrograph of decidua in a lymph node. H&E stain.
Pathology[edit source | editbeta]

A long-lasting infection of the decidua, chronic deciduitis, is associated with pre-term labour.[3]

http://en.wikipedia.org/wiki/Decidua
转录因子 C/EBP-β在人子宫内膜基质细胞分化中的表达及其作用机理研究
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作者: 刘杰
学科专业: 妇产科学
授予学位: 博士
学位授予单位: 华中科技大学
导师姓名: 章汉旺
学位年度: 2012
  第一部分 转录因子 C/EBP-β在人月经周期子宫内膜及早孕蜕膜中的表达 
  目的: 探讨转录因子C/EBP-β在人月经周期子宫内膜及早孕蜕膜中的表达及其变化规律。 
  方法: 采用免疫组织化学技术进行组织学定位,通过Western-blot免疫印迹法进行蛋白质定量,荧光适时定量RT-PCR法进行mRNA定量,在蛋白质水平和mRNA水平检测转录因子C/EBP-β在人正常月经周期子宫内膜及早孕蜕膜中的表达变化。 
  结果: 1.免疫组化结果显示,C/EBP-β主要在人子宫内膜基质细胞核中表达,在腺上皮细胞核中表达较少;增生期子宫内膜中C/EBP-β仅有弱表达,分泌晚期子宫内膜中表达最强,在早孕蜕膜组织中也有较强的表达。2. 免疫印迹法结果显示,C/EBP-β蛋白在正常人月经周期增生晚期表达较低,在分泌期表达逐渐增高,分泌中期C/EBP-β的表达较分泌早期高,但差异无统计学意义(P>0.05),分泌晚期C/EBP-β的表达达高峰,与其他组相比差异具有显著性(P<0.05),在早孕蜕膜组织中其蛋白表达仍维持在较高水平,与其他组相比差异具有显著性(P<0.05)。3. 荧光适时定量PCR结果显示,C/EBPβmRNA在正常人月经周期增生晚期表达较低,在分泌中期的表达逐渐增高,与增生期组相比较,差异具有显著性(P<0.05)。分泌晚期C/EBPβmRNA的表达与其他组相比差异均具有显著性(P<0.05),在早孕蜕膜组织中其mRNA的表达与其他组相比差异也具有显著性(P<0.05)。 
  结论: C/EBP-β在人正常月经周期子宫内膜及早孕蜕膜组织中呈时空特异性表达,提示C/EBP-β可能在人子宫内膜容受性的建立及基质细胞蜕膜化过程中发挥着重要的调节作用。 
  第二部分 建立人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化模型 
  目的:建立人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化的模型,并鉴定蜕膜化模型的有效性。 
  方法:原代培养人子宫内膜基质细胞,采用 8-Br-cAMP 和 MPA 蜕膜化方法处理第三代子宫内膜基质细胞,在显微镜下观察蜕膜化过程中的细胞形态学变化,并采用化学发光法检测蜕膜化过程中不同时间点细胞培养液中泌乳素(PRL)的水平。 
  结果:1. 人子宫内膜基质细胞在体外蜕膜化培养过程中,与对照组相比,细胞发生形态学改变,由细长的梭形逐渐转变为较大的多角形,细胞体积变大、变圆,细胞核变大、变淡,细胞间的界线也变得模糊不清,与人体内的蜕膜细胞形态相似。2. 化学发光法检测到在蜕膜化过程中细胞分泌的 PRL 水平逐渐升高,蜕膜化处理 48 小时(D2)后,子宫内膜基质细胞就有较多的 PRL 分泌,和对照组及蜕膜化 24 小时组相比差异均具有显著性(P<0.05),蜕膜化处理 96 小时(D4)后,其 PRL 的分泌达峰值,和对照组及蜕膜化其他组相比差异均具有极显著性(P<0.01)。 
  结论:采用 8-Br-cAMP 和 MPA 体外处理子宫内膜基质细胞,在 D2 天就可出现明显的蜕膜化改变,在 D4 天可达到理想的水平,是体外蜕膜化过程研究的理想模型。 
  第三部分 人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化过程中转录因子C/EBP-β的表达及细胞周期的变化 
  目的: 探讨人子宫内膜基质细胞在体外蜕膜化过程中转录因子C/EBP-β的表达变化及细胞周期分布的改变。 
  方法: 采用8-Br-cAMP和MPA对人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化处理,分别收集蜕膜化处理0小时(D0)、24小时(D1)、48小时(D2)和96小时(D4)的细胞,采用Western blot进行蛋白质定量,荧光适时定量RT-PCR法进行mRNA定量,在蛋白质水平和mRNA水平检测转录因子C/EBP-β在人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化过程中的表达变化,并采用流式细胞仪检测人子宫内膜基质细胞在体外蜕膜化不同时间细胞周期的分布改变。 
  结果: 1.免疫印迹表明:C/EBP-β蛋白在子宫内膜基质细胞体外蜕膜化过程中表达逐渐上调(0.068、0.140、0.316、0.595),蜕膜化组与对照组相比,差异具有显著性(P<0.05)。2. 荧光适时定量RT-PCR表明:在蜕膜化过程中C/EBP-βmRNA的表达也呈进行性上升(0.020、0.054、0.094、0.486),蜕膜化过程中C/EBP-β的表达明显增加,与对照组相比差异具有显著性(P<0.05)。3.流式细胞仪检测细胞周期的分布变化结果显示:子宫内膜基质细胞在体外蜕膜化过程中随着蜕膜化时间的延长,S期细胞的比例显著减少,G0/G1期细胞的比例显著上升, G2/M期细胞的比例显著下降,差异均具有显著性(P<0.05)。 
  结论: 在人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化过程中转录因子C/EBP-β呈规律性的表达,细胞周期也发生了相应的变化,提示C/EBP-β可能在人子宫内膜基质细胞蜕膜化过程中发挥着重要的调节作用。 
  第四部分 转录因子C/EBP-β通过P57调节人子宫内膜基质细胞体外蜕膜化 
  目的: 通过瞬时转染的方法下调C/EBP-β的表达,研究干扰前后体外蜕膜化的人子宫内膜基质细胞细胞周期的变化和细胞周期蛋白p57的表达,以及细胞分泌PRL功能的变化,探讨转录因子C/EBP-β调节人子宫内膜基质细胞蜕膜化的作用机制。 
  方法: 构建合成C/EBP-βsiRNA寡核苷酸、阴性对照和Cy3连接的阴性对照,转染至体外培养的人子宫内膜基质细胞中,转染6小时后更换培养液,转染24小时后在荧光显微镜下观察,根据荧光素的表达情况判定转染的效率。细胞转染6小时后再进行蜕膜化处理48小时,采用流式细胞检测仪分析细胞周期分布的变化,采用化学发光法检测细胞培养液中PRL分泌的变化,并采用免疫印迹法进行p57的蛋白质定量,荧光适时定量RT-PCR法进行p57的mRNA定量,比较转染和对照组细胞周期蛋白P57的表达变化。 
  结果: ESCs转染C/EBP-βsiRNA后体外蜕膜化48小时S期细胞比例从4.28%上升至6.88%,差异具有显著性(P<0.05);G0/G1期细胞比例从87.34%下降至86.07%,G2/M期细胞比例从8.38%下降至7.04%,但差异并无显著性(P>0.05);转 染 C/EBP- β siRNA 后 体 外 蜕 膜 化 过 程 中 细 胞 分 泌 的 PRL 水 平 明 显 减 少(P<0.05);而且转染C/EBP-βsiRNA后,Western blot及适时定量RT-PCR均检测到人子宫内膜基质细胞中p57的表达显著性下降(P<0.05)。 
  结论:在体外蜕膜化进程中,人子宫内膜基质细胞通过 G1/S 期阻滞脱离细胞周期进而分化为蜕膜细胞,下调 C/EBP-β的表达则影响了蜕膜化过程,而且细胞中 p57 的表达也受到抑制。提示 C/EBP-β在人子宫内膜基质细胞蜕膜化过程中可能是通过 p57 来调节细胞周期的变化。

C/EBPβ基因编码的是一个亮氨酸拉链(basic luecine zipper,bZIP)转录因子,属于C/EBPs(CCAAT enhancer binding proteins)家族,主要通过对靶基因的调节发挥作用.目前研究表明,C/EBPβ参与细胞分化、肿瘤发生、炎症反应、能量代谢等多种重要的生命活动,其功能受到磷酸化、乙酰化、蛋白质相互作用等多种途径的调控. doi:10.3760/cma.j.issn.1673-4386.2011.03.007


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