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H9细胞转染后加药出现细胞成片死亡,像是没贴紧浮起来一样,请问是怎么回事啊 [复制链接]

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楼主
发表于 2015-5-22 20:22 |只看该作者 |正序浏览 |打印
求各位大神告知,谢谢啦
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发表于 2019-8-27 10:43 |只看该作者
一般实验设置实验空白组,实验组和阴性对照组,筛选的药物一定是对干扰组有作用,但是对NC组没有影响的,不然结果就不好分析了,,我们课题组一般是用RFECT方法,用的合成公司的siRNA,一般都是要在NC组上面做预实验。

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发表于 2015-5-31 04:01 |只看该作者
回复 ailiszhang 的帖子
. x$ f; g7 p1 |; C! E7 x; k' V  I# B4 ^' Y9 ]: p9 `, j7 x
你得传代了,样细胞的基质不行了啊
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发表于 2015-5-30 21:28 |只看该作者
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回复 hyde 的帖子, p) @3 f7 F" F$ r2 N

. F! @5 l, j! N3 ~这两天克隆中间出现黄黄的东西,而且边缘爬出梭形样细胞,是不是分化了呀?每次加药后的第二天细胞就会死很多,之前我会停止加药几天,这次没停药,继续加了,不知道明天细胞会不会一个不剩,目前的状态看起来不乐观,好心塞。
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金话筒 优秀会员 新闻小组成员 帅哥研究员

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发表于 2015-5-27 18:16 |只看该作者
稳转?用病毒不是比较容易嘛。稳转就等克隆长大,但没有长在一起的时候,长在一起之后不容易杀,而且孔板的边缘也不容易杀,传代后再杀几次(我一般传几代接着杀杀,保证细胞系的纯度)。阴性对照最好找个带gfp,没有抗性的质粒,这样可以先看看电转的效果,这些细胞也不抗药,杀完为止。不一定每天换液,看细胞多不多,非常少的话我会隔天换的。
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发表于 2015-5-27 16:51 |只看该作者
回复 hyde 的帖子
% i2 i  L+ ]( \# {# ]5 S7 i  V  |& y/ Q
我用的载体中没有GFP,只有PURO抗性基因,做的电转,想得到稳转细胞系。) N: }& N: J) r
我还是不太明白,阴性对照就是没有做转染的正常hES吗?还有阳性对照怎么做呀?克隆大一点具体怎么来判断呢,看直径还是细胞数目呀?你们一般转染后多久加药呢?加药后是每天全换含puro的培养基吗?什么时候停止加药呢?  
5 l6 A% u& Y) @; @$ y+ Z/ P另外,如果有这方面的文献,可不可以分享一下呢?
, G5 n1 L6 k  H& W* o' W# d问题有点多,可能问得也比较白痴,还请不吝赐教,谢谢!
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地板
发表于 2015-5-26 18:42 |只看该作者
本帖最后由 hyde 于 2015-5-26 18:43 编辑
4 z- L/ g- z& {: \0 o
5 o' \+ n' y$ K; l7 ^6 F1 B  C5 H回复 ailiszhang 的帖子
  |7 m1 v. k9 ]$ i( c% t7 i+ M( P, G4 M0 C9 i. z+ ~
阴性对照就是药杀对照,瞬转质粒停留的时间比较短,不能杀太久,对照死完了就停药。我也差不多用0.5的puro,转染的质粒带gfp标记吗,或者做个阳性对照看看转染效率吧。另外,药杀前先将克隆养大一点再杀。
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发表于 2015-5-26 17:55 |只看该作者
回复 hyde 的帖子& ], k6 y% c/ D" J
( f. p9 X- z$ ^0 E
谢谢回答。. ?% g9 c2 P( ]/ {. K
请问阴性对照是什么,有什么作用?药筛过程中还需要设其他对照吗?; x. H! p. a" r7 Q
我做的H9细胞,puromycin筛选,药物浓度最开始加的1ug/ml,死了很多,后来降到0.5ug/ml,第二天细胞就漂了一些,第三天全死了。按照实验室师姐摸索的浓度来加,细胞基本没怎么死。
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金话筒 优秀会员 新闻小组成员 帅哥研究员

板凳
发表于 2015-5-24 09:31 |只看该作者
药杀浓度是否摸索过,什么药物,什么浓度,hes每个细胞系对药物敏感性还是有所差异的,要事先测试一下,浓度太高会死的比较多。
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金话筒 优秀会员 新闻小组成员 帅哥研究员

藤椅
发表于 2015-5-24 09:30 |只看该作者
药杀阴性对照是什么样子的,如果对照死的一样多说明转染的效果不好吧
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