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标题: 诱导iPSCs 过程中的疑惑 [打印本页]

作者: Andyhigh    时间: 2014-10-5 09:59     标题: 诱导iPSCs 过程中的疑惑

  最近,在利用TetOn 的慢病毒系统诱导猪的iPSCs,有一些疑惑想跟大家交流下!9 @) ~3 f) M! B
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1. 载体基本元件的顺序为
) {# Q1 G  p8 M! a5 C- l含目的基因(OSKM)载体:Lenti-EF1α-EGFP-TRE-oct4,含rTTA的载体:Lenti-EF1α-rttA-IRES-EGFP;% W+ S; K7 e( u& u! Q
在用293T细胞系进行病毒包装时,用的各种物质的量和步骤都一样,结果发现含目的基因载体的病毒滴度明显优于含rTTA的载体的病毒滴度,想知道有哪些因素可能导致这一问题?同时在病毒包装过程中,发现有一批质粒出现了污染,重新进行无菌处理,发现细胞还是出现污染(在高倍镜下出现蠕动的小虫,有点恶心哈),想问下这又是哪出了问题(基本排除操作引起的污染)。
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  u% t2 b0 K9 }, @5 y0 z/ U2. 在进行AP染色的时候发现一种现象:6 \7 K, Q2 X) y' l( b$ }! ^% S6 v
     对形成的克隆进行AP染色时,发现没形成明显克隆或已开始分化克隆的边缘呈现AP 阳性,而正常的克隆确呈现AP 阴性,想问下这是否有可能是由于克隆细胞密度较大,不易着色导致的嘛?后面将补充图片···9 |. ^- }$ ?1 U3 q
      还有一个问题就是,是否有一种可能AP 阴性的克隆随着培养和传代,慢慢的变成了AP阳性的克隆?
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4 k7 h: i$ l" k3. 挑取克隆时间等问题
5 c5 P6 W; Y) e    不知道大家是根据什么确定挑取克隆的时间的;前段时间挑取一个不规则的克隆(不呈现标准的圆形或椭圆形,体积适中)消化成单细胞至lif-2i体系和基础培养基体系中,发现前者第二天大量死亡,而后者3d时也没有形成克隆;而差不多大小的圆形克隆能支持单细胞传代;
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, Q. G: I8 M5 z  Y4. 克隆问题
8 q7 Y( P: _! H8 z# G   目前,自己获得的克隆进行单细胞传代后大概2-3d能形成克隆样(此时像小鼠iPSCs样克隆),但随着时间的推移,发现慢慢地向人iPSCs的形态发生转变;并且大部分克隆不发绿色荧光(7孔中6孔不发荧光,荧光为EGFP见载体,这能否说明外源性的OSKM已不表达,而内源性的调控网络可能激活?而最后一孔出现了一种奇怪的现象:出现了两种形态和颜色明显不一样的克隆A(跟其他6孔一样)和B(相较于A明显小一圈,且是在克隆A出现后3d左右大量出现的),其中A不发绿色荧光,而B发荧光(很强),后面将附图说明。有人帮忙推断,这有可能是细胞不纯 或 细胞癌变 导致的。并且这些克隆基本上(出现了如上AP染色问题,所以用了基本)呈现AP 阴性,但A克隆能支持单细胞传代,B克隆正在试验。
4 f( w- k: d* }9 u# w# [/ f   由于使用的是DOX系统,根据个人的认识,好像猪iPSCs 上这样的克隆都需外源添加 DOX等维持外源OSKM的表达,而维持克隆的未分化状态。在小鼠上,好像看到个一篇用TetOn系统诱导的克隆,在撤除Dox后,细胞还能维持未分化状态,说明其内源性的多能性调控网络已激活,但这篇文章找不到了,不知道有没有高手提供点线索。在猪上自己还没有见到过这样的文章,不知道有没有可能存在这种情况。目前,试验缺少重复,还需完善;并且图片还没拷贝出来,后面将附图,希望大家根据自己的知识解答下我的疑惑。
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! B1 E) W7 a; p4 |5 |2 z. D补充内容 (2014-10-5 19:35):
" s, M# X. d! _) a8 A/ {3 b; X今天发现 B 类克隆保持了之前克隆的形态和颜色,而A 类克隆是在 B 类 克隆进行单细胞传代后形成的克隆,目前该克隆的增殖能力还在检测当中(之前的判断有误或存在偏差,没有直接证据证明该克隆能支持单细胞传代)
作者: Andyhigh    时间: 2014-10-5 19:27

下面三幅图片分别 克隆形成初期 中期 后期,其中初期和后期呈现部分AP阳性,而中期为阴性[attach]64410[/attach][attach]64408[/attach][attach]64410[/attach]
9 J& H& [; ?; \
6 d& `$ ?: M6 c. S2 i补充内容 (2014-10-5 19:29):8 s' o9 e7 ~8 Z2 |
图片 不是 很好 编辑和 排序
作者: zhangweihwz    时间: 2014-10-8 17:07

在Rudolf Jaenisch lab 所发表的iPS 文章中,使用FUW-Tet-on系统制备的iPSCs,在后期撤除Dox后,iPSCs基本上可以维持pluripotency。
5 W6 i; X. G, g0 I. B- E但是Dox诱导体系,并不是绝对精准调控的体系,在撤除Dox后,外源基因也可能会表达。
作者: Andyhigh    时间: 2014-10-8 21:06

回复 zhangweihwz 的帖子8 W4 r9 q- t) a; T
0 J/ u2 x: t' z5 Q4 L. P
谢谢你的回答!
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# C" C  \4 E5 b1 _( y) L经过这几天的实验,发现 A  类克隆呈 AP 阳性,而B 类克隆部分呈现AP阳性,并随着B类克隆的单细胞传代,也会逐渐变成A 类克隆(部分变成)----初步判断 A 类克隆的重编程程度高于B,B是重编程过程(体细胞-A 克隆)中的一个阶段;明天上图
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同时,对A类克隆撤除DOX后,发现细胞克隆形态还能维持,且用Tryple 消化传代发现,细胞增殖速率也挺好(1:7传代,24h后能明显可到克隆,且密度较大),明天上图吧!2 ]0 Q2 Y8 w" K/ z

! ^7 `( ^: b, i% s  {还有一些检测还在进行当中,如免疫荧光染色!
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$ `! `& k9 q3 D: H' s0 E目前的问题:7 i, v* c; B0 }
1. 不能确定A 类克隆的内源性调控网络是否建立(如OSKM的表达),不知道有什么好的方法没???. f- m. @* {$ i  g8 g( [1 H
2. 不知道A 类克隆是否来源于猪的体细胞,还是混杂了其他的细胞(如饲养层细胞,或者细胞建系时混了一些其他细胞);. {2 k3 u6 \" W6 f2 _
3. 实验缺乏重复,真担心再次诱导不会像第一次这么幸运。: @, y1 t, Z7 P3 ~. t% q

+ G9 p' a( Y; \0 H3 q还麻烦zhangweihwz 提供下 你说的文章题目,这样我好检索(最好能上传下),谢谢!
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作者: Andyhigh    时间: 2014-10-8 21:28

回复 zhangweihwz 的帖子
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* l* W& P0 U9 W8 N& \) w  u想问下是 2008年在cell stem cell 上的文章-Sequential expression of pluripotency markers during direct reprogramming of mouse somatic cells-嘛?期待你的答复,这个对我真的很重要? 可以的话还麻烦推荐一些相关的文献,如在人 上是否有相关的案例!




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