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细胞培养的污染(转)     [复制链接]

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发表于 2009-7-10 16:20 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
常见的污染如下:
7 c5 ?4 M, C( L1 d7 d1、细菌:细菌在普通倒置显微镜下为黑色细沙状,根据感染细菌的不同,可有不同的外形,培养液一般会浑浊变黄,对细胞生长影响明显。
# o1 M6 X7 e5 x7 B; m7 L3 o仔细检查一下器皿的灭菌情况,是否在高压灭菌时放气时间足够,压力足够!尤其是和储存培养液接触的移液管等物品,连续两次污染的话有可能造成储存液污染,一定要注意!下次使用前检查一下培养液是否存在浑浊的现象!
  J7 J( z6 D# [* g可在培养液中加相应的抗生素处理5 i' f/ d+ g8 L

& w3 K" n: J. ~( t5 Y6 `' P9 e* M2、霉菌:培养液是清亮的,倒置显微镜下无杂质,37度孵箱培养2-3天,仍清亮,但出现絮状杂质,镜下可见呈细丝状的团状漂浮物,可看到明显的菌丝,细胞仍可生长,但时间长之后,细胞的活力状态变差,% a( p- N8 @, H6 v
用硫酸铜溶液擦拭CO2孵箱内,再把水盘里也加上饱和量的硫酸铜。或者在培养箱的托盘加入饱和的消毒磷酸氢二钠高盐液体,可以防止霉菌污染。( F4 g+ s7 Z) V7 ~1 y
CO2孵箱被霉菌污染后,可把所有细胞暂时转移,采用过氧乙酸擦洗孵箱(包括隔板,箱壁)。并把过氧乙酸放置在孵箱内一个小时,使其蒸汽弥漫。待过氧乙酸的气味消散后,再移入细胞。孵箱应定期清洁(2月左右),尤其在多雨的季节。+ t0 ~  v& a1 s1 s1 U$ E
其它培养箱清洗方法是:用84液擦洗-清水擦洗-75%酒精擦洗-紫外灯照。0 U! y( u; C* {! s$ r5 u. O9 J
预防霉菌污染,可在培养基里加3u/ml的两性霉素或制霉菌素或放线菌素D或双抗;但细胞一旦污染,很难挽救,制霉菌素或放线菌素D或双抗都于事无补,建议舍弃该污染细胞。,将环境彻底消毒,如果所有细胞都污染,可能是系统污染,检查一下培养基和器材,如果只是个别污染,可能是操作问题,就要注意操作 $ X& H0 j0 ]. K

! o4 U3 f( H7 `) q& q3、支原体:黑色的,好象多为多形,培养液一般培养液一般会浑浊,原体感染,国内血清很多都没有做支原体阴性检测,而支原体是牛血清中最常见的微生物之一。而且它不能用过滤的办法除去。支原体感染细胞以后,细胞病变不很明显,只是慢慢死去。- B0 G8 b- x1 X! }9 \0 |1 S( _
用泰乐菌素,兽用支原体病的药,但可用于细胞培养,无任何不良反应。Sigma公司的使用时用50ug/ml Tylosin培养液培养6天或连续传两代即可清除支原体污染。如果作为常用的抗生素的话, 建议用8ug/ml的浓度。
) d+ l, t: r! W/ ]5 }# ?4 c* W% F$ l! j6 u7 c
4、黑蛟虫:可以穿透滤膜,也可以通过空气传播,低倍下为黑色点状,高倍下可看见黑色的小虫游来游去,培养液也是不浑的,一般不会太影响,细胞还是可以用的。常常是细胞生长状态良好,且观测到的运动物无明显增多,且培养液颜色、透明度无明显变化,可在同一批号的血清养的细胞中发现类似现象。对细胞生长状态不会有明显影响,在细胞增殖旺盛之后会自然消失,除更换血清外无须特殊处理。建议如果细胞有可能是此种污染的话,可以增加细胞的种板密度,以提高细胞的生存率。
( T- l5 |% Q* s, e, s
3 |' Z3 R% X! t/ y  l$ K, z4 f5、真菌:一般培养液清亮,不变色,镜下有丝状物,有些真菌开始很像死细胞碎片,只是它很多很多的小块很清楚,象珊瑚状,不象细胞碎片分不清,慢慢的会长出很细的黑色丝状物。真菌生长的比较慢,不象细菌那么容易被发现,但是一旦发现有它的存在细胞就被污染了,也很难救活了。8 K' b0 m+ A: W8 f
* ]( M! j4 K* h( z
6、原虫:培养液可轻微浑浊,显微镜下那些细小的点状物数量非常多,轻微活动,细胞虽然可以生长但繁殖速度却明显减慢,而且细胞状态不好,边缘不清楚,细胞不透亮。他们与细胞可共生但会与细胞争夺营养。这种共生是非常普遍的,但他们的数量小,细胞站优势所以不会影响到细胞的正常生长,只有当他们到达一定的数量时就会影响到细胞的生长,最终形成恶性循环。
& k7 v) q1 A- L* [0 W
8 V  p# S" w: S3 n, E  l, @9 N2 @污染的可能原因:可能原因很多比如配液消毒问题、操作问题、环境问题等等
1 h1 n& K( v. l6 H  m5 v关于培养基的无菌状况,取培养基至培养瓶中(不加细胞),37度试培养一段时间后观察。如果没有细菌生长 就是操作的问题。5 m3 l" a4 l# I
也可以在培养基中事先加入双抗(硫酸链霉素和氨苄青霉素)。但双抗有时会影响细胞的状态,所以在做转染、检测细胞某项指标前一定要撤去双抗,以避免影响实验结果。( }- s% `: O4 I0 @7 B
% z4 o' @$ A/ T7 C& E
1、孵箱应定期用三氧机消毒 或者 紫外光照射,并用酒精和新洁尔灭试擦孵箱同时孵箱内的水应是三蒸水" j& @; o9 M* J8 ]7 }& o- X7 U" Q
2、超净台\取材\器材\培养液\培养瓶\操作等因素
0 a: B8 n' R& h" Q1 |' _3、超净台的风机不能过大,风机到6-8格。否则也可能能致霉菌污染/ w6 m8 ]" \) ?1 m
4、无菌室经甲醛熏蒸消毒后,可用同等量的氨水喷洒中和,约几小时即可进入操作。
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沙发
发表于 2009-8-12 23:04 |只看该作者

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发表于 2009-8-12 23:05 |只看该作者

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发表于 2009-8-28 09:17 |只看该作者
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谢谢支持~~

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报纸
发表于 2009-9-3 09:25 |只看该作者
1# sailboat # E2 J* y9 G5 }) J  a5 X/ ?& r! z
对于第三点支原体污染的疑惑:我们实验室一直对细胞,血清做支原体检测:支原体并没有颜色,污染细胞后,培养基颜色会很快变黄,但依旧澄清;被支原体污染的细胞依个性而定,有的状态糟糕很明显;有的没什么影响.
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发表于 2009-10-23 22:58 |只看该作者
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发表于 2009-12-13 13:36 |只看该作者
支原体而且它不能用过滤的办法除去。
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是可以过滤除的。 有0.1微的滤膜。进口血清都是0.1滤的,2次
7 y- a, p7 t! U) A
( h8 y, @$ T6 w$ |一般感染了,就不要了。想除比较麻烦,有不少公司卖除支原体试剂,周期漫长,而且杀菌剂对细胞的影响也不好预计。- }: n" x8 Z3 ]' b
我认为支原体感染,一般不是由操作引起的,是由血清或其他人细胞那来的。你除了细胞里的有什么用?源头又没控制。
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发表于 2009-12-15 22:27 |只看该作者
好贴 值得仔细学习思考

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发表于 2009-12-16 23:55 |只看该作者
受教了……

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发表于 2010-4-2 12:10 |只看该作者
学习了,谢谢
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