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损伤肝组织匀浆诱导间充质干细胞甲胎蛋白和白蛋白的表达 [复制链接]

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发表于 2009-3-3 11:51 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
作者:王莹  罗速作者单位:北华大学基础医学部,吉林  吉林  132013
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; P, D. ]( ]5 B3 s, e, m                    
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( U& a3 G6 w( u1 W! ~! o) H        
) G! i/ b# P6 T" q1 i  ]( R8 V2 P          【摘要】    目的  建立分离、纯化大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)的方法,探讨损伤肝组织匀浆对MSCs的诱导分化作用。方法  采用密度梯度离心、贴壁培养法分离培养大鼠MSCs,以10%损伤肝组织匀浆、10鸖的LDMEM诱导培养,并在不同时间点采用免疫组化方法(SP)检测甲胎蛋白(AFP)和白蛋白(Alb)的表达。结果  MSCs在含10%损伤肝组织匀浆的10鸖 LDMEM培养基中培养,呈类上皮样细胞。诱导组在培养7 d时,大部分细胞呈AFP阳性表达(75.2%),与对照组比较有显著差异(P<0.05); 诱导培养 14、21和28 d AFP 表达阳性率分别为35.2%、12.3%和2.0%,与对照组及不同时间点比较差异显著(P<0.05);诱导组在培养7 d仅少数细胞Alb呈阳性表达(14.6%),诱导培养14、21和28 d Alb表达阳性率分别为67.6%、88.9%和95.6%,与对照组及不同时间点比较均差异显著(P<0.05)。结论  该方法可获得纯度较高MSCs,损伤肝组织匀浆可诱导MSCs表达AFP和Alb。
: K' ?% D6 ^/ c/ I5 b+ o          【关键词】骨髓;间充质干细胞;甲胎蛋白;白蛋白* k; k, J+ y. n! ^
                    间充质干细胞(MSCs)是骨髓内造血干细胞以外的非造血干细胞,最近许多研究证明,MSCs具有高度可塑性,在特定环境下除可以分化为中胚层组织外,还可跨越胚层界限分化为外胚层以及内胚层的组织细胞。研究发现肝细胞生长因子(HGF)、成纤维细胞生长因子(FGF)4等有诱导骨髓MSCs向肝细胞分化的作用〔1~3〕,但对骨髓MSCs的分离培养、体外扩增的影响因素、定向分化的条件等所知甚少。本研究采用密度梯度离心、贴壁培养法和消化时间的控制等几方面相结合,纯化大鼠骨髓MSCs,并以损伤肝组织匀浆为诱导剂诱导培养骨髓MSCs,探讨损伤肝组织匀浆对骨髓MSCs的诱导分化作用,为其向肝实质细胞定向分化选择最适微环境。. g/ j' A: M5 R/ K" ?* ]! j
* l2 z( n/ n/ U, ?) @' H/ F; F
  1材料与方法' Z: j) N; O" ?6 F- ]

. m1 H" S* a# m2 ]  1.1材料- }7 O: ~/ D: ?5 c6 A' n9 }5 U6 _% D
3 {; `/ w- O6 p5 _2 }* r0 S
  DMEM培养基(Gibco),胎牛血清(天津血液研究所),胰蛋白酶(Sigma),淋巴细胞分离液(上海试剂二厂),SD大鼠(长春开发区医学动物实验中心),兔抗大鼠甲胎蛋白(AFP)单抗、兔抗大鼠白蛋白(Alb)单抗(丹麦DAKO公司),SP免疫组化试剂盒(迈新公司)。: v5 W6 A6 G' s# }  |

1 G; Y2 N& Y. X) F# c; U* ~  1.2大鼠骨髓MSCs的分离纯化、培养扩增( a4 f( k  w' `+ n
6 B- q/ O* W  q% U  ]5 ~# ]& W, w
  选用8日龄SD大鼠乳鼠(体重8~10 g),颈椎脱臼法处死,无菌条件下分离股骨胫骨,冲洗骨髓制成细胞悬液,采用密度梯度离心法分离单个核细胞。接种2106个细胞于10 cm培养皿中,37℃、 5%CO2培养,72 h后第1次换液,约10~14 d细胞接近融合时按1∶4传代,并标记为第一代,至贴壁细胞融合铺满瓶底,重复以上操作,反复传代扩增,并依次标记为第2~9代。
' N" D0 W1 ~0 I* F! q- T8 O+ c- N/ i  b) L% f
  1.3大鼠骨髓MSCs表型特点鉴定. k2 y" p* L; j% `/ R) U
8 F# \( _" S0 C% n0 {7 Y) Z5 E6 ^5 t
  取3代MSCs细胞接种于24孔培养板中(孔中预先放置无菌盖玻片),每孔1104个,37℃、 5%CO2培养,待细胞接近80%融合时,取出盖玻片,PBS冲洗,10%中性甲醛固定15 min,蒸馏水冲洗,3% H2O2/甲醇作用30 min,蒸馏水冲洗,滴加一抗(CD105、CD166)后于37℃孵育1 h,PBS冲洗,滴加生物素二抗,37℃ 30 min后PBS冲洗,滴加SABC,37℃ 30 min后PBS冲洗,DAB显色,以PBS作为一抗阴性对照。1 p" t4 }% n4 K+ s$ t

1 B; q& f: N0 ]# r/ f1 Y  1.4损伤肝组织匀浆的制备$ g5 T, J+ H) K2 z, K
; h7 n$ M8 L, f5 }2 d/ n7 h
  6~8 周龄SD健康大鼠10只,体重180~200 g,单笼饲养,禁食12 h。肝大部分切除(全肝体积的78%)24 h后处死大鼠,称取肝组织湿重,按150 mg肝组织/ml LDMEM比例加入无血清培养基,于冰上将肝捣碎,4℃、12 000 r/ min离心20 min,取上清液作为损伤肝组织匀浆。" E) U8 g% _) F9 P( H
- X6 W9 B' K; I  K- _9 p
  1.5应用损伤肝组织匀浆诱导MSCs分化
! Q1 l; ~4 N6 j8 O6 N  h. q4 |# w( h( B5 O3 c$ c9 P
  取3代细胞,调整细胞浓度至(1104·ml-1),接种于3.5 cm培养皿内(2104个,皿内预置无菌盖玻片),37℃ 5% CO2培养,实验组培养基为含10%损伤肝组织匀浆、10鸖的 LDMEM培养基。对照组取同代细胞,常规培养液培养。每3~4 d换液1次,相差显微镜下逐日观察细胞形态。分别于培养0、5、7、14、21及28 d取出细胞爬片,10%中性甲醛固定,干燥后于-20℃保存备检。
, \3 s; @: `- _. M" ]' \% W0 K! ~, M) H$ b, l% e
  1.6SP方法检测MSCs细胞AFP和Alb的表达$ s' g) M& |3 v5 ?$ I% d

" V6 k; B+ l' m  具体方法参照说明书,苏木素轻度复染。以胞浆内出现棕黄色颗粒为阳性细胞。将染色强度和阳性细胞百分率相结合判断免疫组化染色结果。
% b2 L# v7 W- ~5 o) y9 G& I* f$ N4 N# U2 `7 e- L
  1.7统计学处理5 D- P* M. x. }, \+ i1 p2 L, n

3 v1 y: d1 U$ |  采用SPSS13.0软件包进行χ2检验。7 B9 I+ W) t! g

; n7 X) P, H# p6 S4 o3 r6 _  2结果
! |2 l$ d0 l# r& a2 V$ X1 e
8 A. T8 j2 ~4 g6 H  2.1大鼠骨髓MSCs的分离培养) A  x- a3 u$ W+ ^

% F$ q0 D% d" H8 u* V3 C3 ?  密度梯度离心获得比较均一的球形单个核细胞,培养72 h后首次换液,部分细胞贴壁并分裂增殖,6~9 d后散在贴壁细胞增多,形成多个细胞集落。随着时间延长,集落不断增多、扩大、互相融合,约12~14 d细胞融合成单层,铺满瓶底。传代细胞很快贴壁,增殖迅速,呈梭形均匀分布,传代MSC生长较原代MSCs生长快,约7 d长满瓶底,连续传9代,细胞形态无明显变化,无衰老征象,但9代以后细胞增殖较慢,传代周期延长。骨髓MSCs具有特征性的表面标志,其特点是不表达CD34、CD45,而只表达CD29、CD44、CD105、CD166等基质细胞和MSCs的特异性表面标志,尤其是CD105、CD166已作为骨髓MSCs的特征性标志〔4〕。SP染色阳性结果为胞浆内充满棕黄色颗粒。第3代MSCs细胞的CD105、CD166均为阳性(图1)。% Z* p  Y: N% b2 R. r" a+ z

7 v" ^! I/ Q2 g+ h% y! A1 h  2.2损伤肝组织匀浆诱导大鼠骨髓MSCs分化表达AFP和Alb
6 }7 L& L/ ?5 K$ @) V; R' d$ O% `" v) p; A( I' o! T
  大鼠骨髓MSCs在含10%损伤肝组织匀浆、10鸖的LDMEM培养基中培养,细胞生长状态良好,并呈现明显的形态改变,镜下观察细胞变得稍大而扁平,呈类上皮样细胞;对照组细胞未发生形态学改变,第7天已铺满瓶底,呈成纤维细胞样整齐排列(图2)。SP染色结果显示,对照组细胞无AFP 表达;诱导组在培养7 d时,大部分细胞呈AFP阳性表达(75.2%),与对照组比较差异显著(P<0.05); 诱导培养 14、21和28 d AFP 表达阳性率分别为35.2%、12.3%和2.0%,这一结果表明随着培养时间的延长,AFP阳性表达逐渐减弱,差异显著(P<0.05);对照组细胞无Alb 表达,诱导组在培养7 d仅少数细胞Alb呈阳性表达(14.6%),诱导培养14、21和28 d Alb表达阳性率分别为67.6%、88.9%和95.6%,与对照组比较差异显著(P<0.05),而且随着诱导培养时间的延长Alb 表达逐渐增强(P<0.05)。$ u# K- Q# z9 D! Z
8 p. ?. Y! D3 O9 w: ^: z2 y. P
  3讨论6 J% c) U" U2 @* t& k1 F& Q" G
5 x5 j+ @, A9 E8 c
目前骨髓MSCs的分离主要有4种方法:贴壁法、密度梯度离心法、流式细胞仪分离法和免疫磁珠法。本实验将密度梯度离心与贴壁培养法相结合,用淋巴细胞分离液对骨髓做梯度离心,除去绝大部分红细胞、粒细胞、脂肪细胞和血小板,获得纯度较高的单个核细胞,再根据贴壁性差异,纯化MSCs。结果显示,体外培养骨髓MSCs呈成纤维细胞样的生长特性,1、3及5代细胞的形态、生长曲线无显著差异,连续传代培养9代,细胞形态无明显变化,无衰老征象;传代细胞潜伏期短,增殖迅速,培养时间短;随着传代次数的增加,细胞均质性明显提高,细胞增殖速度无明显下降。SP结果显示,3代细胞均表达CD105和CD166,表达阳性率几乎是百分之百;用含20%马血清的LDMEM培养基诱导培养,MSCs发生形态变化并且胞浆内出现大量脂肪滴,这一结果说明,本实验实现了MSCs向脂肪细胞的定向分化。
" c; L! s9 [2 R: I8 X  L% N1 A2 x4 z* g8 V; {  y; b
骨髓MSCs有多种分化潜能〔5〕,有研究发现,肝大部分切除术后24 h大鼠血清可诱导骨髓细胞向肝细胞分化〔6〕。大鼠2/3肝切除后,施以肝脏强大的再生刺激,合成和分泌大量促进肝细胞增殖的因子,术后24 h,血清HGF和残余肝细胞的DNA合成达到最高峰〔7〕,在细胞分化的特定条件下,多数细胞均有其细胞骨架的特定组分或产生特定代谢的酶,这些蛋白在各细胞中表现出其组织特异性。AFP和Alb均为肝细胞系较为特异的标志,AFP是不成熟肝细胞的标志,Alb是最常用和可靠的一个肝细胞功能的检测标志。Alb主要由肝细胞合成和分泌,其他细胞分泌极少,用SP方法很难检测到〔8〕。本实验结果显示,未经诱导的骨髓MSCs不表达AFP和Alb,经条件培养基诱导培养的骨髓MSCs呈类上皮样细胞,培养7 d时,大部分细胞AFP呈阳性表达,随着培养时间延长AFP表达减弱;培养7 d时,仅少数细胞Alb呈阳性表达,随着时间的延长Alb表达逐渐增强。表明损伤肝组织匀浆能够诱导MSCs定向分化为肝细胞样细胞,损伤肝组织匀浆可以诱导骨髓MSCs分化为肝细胞样细胞,推测可能是损伤肝组织匀浆中某些成分可诱导MSCs分化有,但具体是哪种成分起作用尚待深入研究。; M2 J& T1 l( V6 ]& u5 {
          【参考文献】) z2 Q2 ~- }' _7 \7 F
  1  Yamazaki S, Miki K, Hasegawa K, et al. Sera from liver failure patients and a demethylating agent stimulate transdifferentiation of murine bone marrow cells into hepatocytes in coculture with nonparenchymal liver cells〔J〕. Hepatology,2003;39(1):1723.  g% _2 z2 }9 K9 A
  y  T, n# i4 O4 ]+ y5 N' b
9 u2 V& T% \0 O' A7 m9 `
/ N# z8 W. l# g4 F6 A9 F
  2  Schwartz RE, Reyes M, Koodie L, et al. Multipotent adult progenitor cells from bone marrow differentiate into functional hepatocytelike cells〔J〕. J Clin Invest, 2002;109(10):1291302.
5 P: U3 W! I3 s9 {# P* D
! D0 W1 T$ x9 S: g  f/ F
! |. p) E% a, m$ p/ t
" u7 @1 ~; o! E2 _% k' b8 _6 {/ p4 P* T  3  鲁学恒,马力,刘沛.体外诱导大鼠骨髓间充质干细胞向肝细胞分化的实验研究〔J〕.中国医科大学学报,2007;36(3):2568.1 s. I1 O$ [! ^# i" x  a* f# c
# W2 Z6 v! H6 g) V) z

0 I# Z$ i$ G, _8 A# b3 g8 i2 A0 g# D- S# B
  4  何念海,赵文利,王宇明,人脐血间充质干细胞体外诱导分化为类肝细胞〔J〕.世界华人消化杂志,2005; 13(15):18148.
  T3 s* d  b+ c8 C, O; z1 }5 z3 r( u" ?5 `
, e* ~6 n1 p) _. _% Q, ~

7 [* h7 \% K: ^/ @  5  邓方阁,张秀英,王心蕊,等. 体外模拟心肌微环境中人骨髓间充质干细胞向心肌细胞的分化〔J〕.吉林大学学报医学版,2007;33(2):2579.
" [# {: A$ w! r, h/ {$ W* m' f* y- z

: C5 Q8 b! c; P  D& A6 k" s0 D9 Z, ^4 q) I1 q# V- S
  6  周播江,钟翠萍,顾云娣,等.肝再生大鼠血清诱导骨髓干细胞向肝细胞分化的实验研究〔J〕.中华肝脏病杂志,2004;12(12):7303.
# L$ L& e- Y# }# z+ g* R
! [5 |( u  K4 S
; p5 C0 N* l$ Q& [- X. F9 M
  ]+ |$ {+ L& O4 {  7  Miyazaki M,Akiyama I,Sakaguchi M,et al. Improved condition to introduce hepatocyte from rat bone marrow cells in culture〔J〕. Biochem Biophys Res Commun,2002;298(1):2430.' q/ J( K% Q) Q: p5 m
" @; M5 M# o0 X3 O! a( T
0 p0 D/ F& z+ P9 V+ L

/ }7 O" E) K" d8 W  8  李翰昊,晏雪生,明安萍, 等. 肝脏细胞条件培养基诱导大鼠骨髓间质细胞分化为肝细胞的作用〔J〕. 中西医结合肝病杂志,2005;15(1):2830.

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沙发
发表于 2015-6-11 16:35 |只看该作者
谢谢分享  

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发表于 2015-7-21 12:58 |只看该作者
小心大家盯上你哦  

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板凳
发表于 2015-8-23 07:07 |只看该作者
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琴棋书画不会,洗衣做饭嫌累。  

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发表于 2015-10-5 15:52 |只看该作者
帮你项项吧  

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发表于 2015-10-11 11:26 |只看该作者
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发表于 2015-11-3 13:55 |只看该作者
文笔流畅,修辞得体,深得魏晋诸朝遗风,更将唐风宋骨发扬得入木三分,能在有生之年看见楼主的这个帖子。实在是我三生之幸啊。  

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发表于 2015-11-7 10:26 |只看该作者
哈哈,看的人少,回一下  

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发表于 2015-12-2 19:00 |只看该作者
哈哈,有意思~顶顶 ,继续顶顶。继续顶哦  

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发表于 2016-2-28 18:01 |只看该作者
加油啊!偶一定会追随你左右,偶坚定此贴必然会起到抛砖引玉的作用~  
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