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楼主: 相宜
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浓度为0.1%的I型胶原酶的配制详细方法,高手请多指点   [复制链接]

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发表于 2012-4-6 17:59 |只看该作者
回复 niyou 的帖子2 F9 ^$ p$ m+ C4 p
1 j7 i6 g: E  S, j* Q$ `
大侠你好,“0.2微米滤器”你能不能介绍下它的详细资料和操作步骤。我上次就是直接用PBS溶的,结果15ml离心管里面呈现淡褐色的混悬液,也没有过滤就直接加进去了。怕是漏了重要的一步。
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发表于 2012-4-6 20:59 |只看该作者
PBS和培养基配都可以,我是PBS配的,时间我每次的时间比文献的短,37℃半个小时
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发表于 2012-4-6 23:52 |只看该作者
回复 jkfly 的帖子8 Y' |! ]0 ?: L/ P+ i

) f/ F# p# }4 j" N9 m, O  {( \- }0 v具体有没有就是消化到可以的时候,里面脂肪组织的一些客观的指证,比如像形态、色泽什么的一些就是消化完全的一些指正?另外是都需要过滤吗?37度是就单纯放置在培养箱还是恒温振荡?
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发表于 2012-4-9 10:48 |只看该作者
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胶原酶保存条件是4度 别被楼上的给忽悠了 0.22um滤器过滤下 PBS也能配 但是主要考虑到在培养基配制时候细胞存活环境会更好一点
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发表于 2012-4-9 13:31 |只看该作者
回复 zz091115 的帖子
+ O) s7 I2 c  n/ Q& y- f: f  Y2 E* u( Y; @
胶原酶不是在-20度保存吗?你说的保存条件是4度是说的配好后存放于4度冰箱吗?
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发表于 2012-4-11 13:27 |只看该作者
回复 相宜 的帖子
% t2 [: a4 y7 D; g; r
2 i$ D- _6 L4 v" P3 ~- B6 J% i6 v" f我看国外protocol是要震荡的,我自己是15分钟去晃一下,放在培养箱里的,我觉得还是震荡的好
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发表于 2012-4-11 13:28 |只看该作者
回复 相宜 的帖子
- ]! b; h) |7 o6 c
6 M3 e) k* B6 H& p4℃应该是粉剂,我们也是放在4℃的,配好后也是放4℃冰箱。一般用2周后再重新配。
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发表于 2012-4-11 20:22 |只看该作者
回复 jkfly 的帖子& R& W. Q! l7 i/ C2 n2 ?

8 }2 M8 H/ J+ C) k/ J啊 我就把粉剂放在-20了,配好分装后也是放在-20里面,那你说会不会受影响呢?0 F! s) u" `& d

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发表于 2012-4-18 21:41 |只看该作者
回复 B1228 的帖子
/ B8 i! V! p9 V* G! ]9 I
' f4 r8 {1 B# }; F100ml里0.1g
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发表于 2012-4-19 10:35 |只看该作者
回复 相宜 的帖子
! u; {4 ^8 [1 Y8 I- q4 [3 r/ d2 ~4 x* W/ i- v$ P7 y' L/ M# r5 p1 z
粉剂的配制是质量体积比,g/ml,所以0.1%就是0.1g的胶原酶配上100ml的液体,可以用PBS,也可以用含血清的培养基(Ⅰ型此法少见,主要用于Ⅱ型等消化较难消化的组织如软骨等,可消化过夜,并不用担心血清影响消化能力的问题)。配制时,可以分装到青霉素瓶里,不用的-20℃保存,用的时候拿出来37℃融化,尽快用完。消化时间40min~1h,观察大组织块消失,消化液呈糊状即可。
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